Ang pagsasagawa ng pananaliksik gamit ang paraan ng PCR ay pinahihintulutan batay sa mga umiiral na laboratoryo, sa kondisyon na ang laboratoryo ay may mga independiyenteng lugar ng trabaho o mga lugar ng trabaho na inilalaan bilang bahagi ng iba pang functional na lugar na tumutugma sa mga yugto ng pagsusuri ng PCR.
Dapat isama sa laboratoryo ng PCR ang sumusunod na minimum na hanay ng mga lugar na pinagtatrabahuan:
- pagtanggap, pagpaparehistro, pagsusuri at paunang pagproseso ng materyal;
- Pagbubukod ng DNA/RNA;
- paghahanda ng mga mixture ng reaksyon at pagsasagawa ng PCR;
- pagtuklas ng mga produkto ng amplification sa pamamagitan ng electrophoresis o Hyphae.
Mahalagang tandaan na kapag ginagamit ang pamamaraan, hindi na kailangang makita ang mga produkto ng amplification sa pamamagitan ng electrophoresis. Samakatuwid, hindi na kailangang maglaan ng isang nagtatrabaho na lugar sa laboratoryo para sa electrophoresis.
Sa mga laboratoryo ng PCR, kinakailangan ding magbigay para sa pagkakaroon ng mga pantulong na lugar: isang archive (para sa mga dokumento ng accounting), isang silid ng kawani, isang tanggapan ng tagapamahala, mga silid ng locker para sa mga empleyado, mga silid ng pagkain, mga silid ng sanitary (toilet), mga silid ng utility ( bodega).
Sa isip, kinakailangan na magkaroon ng isang silid ng autoclave para sa pagdidisimpekta ng materyal sa pagsubok. Maaari itong ibahagi sa ibang mga departamento ng institusyon, na napapailalim sa pagsunod sa mga kinakailangan sa biological na kaligtasan.
Ang mga lugar para sa pagsasagawa ng trabaho sa mga yugto ng pagsusuri ng PCR ay dapat na nakakahon (mga kahon na may mga pre-box). Sa lugar ng pagtanggap, pagpaparehistro, pagsusuri at pangunahing pagproseso ng materyal isagawa ang pagtanggap ng materyal, paghahanda ng sample (pag-uuri, pag-label, centrifugation, atbp.), pag-iimbak at pangunahing hindi aktibo ng mga biomaterial na residu na may mga disinfectant. Ang lugar para sa pagtanggap, pagpaparehistro, pagsusuri at pangunahing pagproseso ng materyal ay matatagpuan sa silid ng pagtanggap ng materyal o sa isang hiwalay na silid na naka-box. Dito maaari ka ring tumanggap at magproseso ng mga sample para sa pananaliksik gamit ang iba pang mga pamamaraan (immunology, halimbawa), sa kondisyon na ang isang hiwalay na kagamitang workstation ay inilalaan para sa pagsusuri ng PCR.
Lugar ng paghihiwalay ng DNA/RNA inilagay sa isang hiwalay na silid. Kapag nag-oorganisa ng isang laboratoryo ng PCR batay sa isang umiiral na laboratoryo, pinapayagan ang paghihiwalay ng DNA/RNA sa mga lugar kung saan isinasagawa ang iba pang uri ng pananaliksik, maliban sa gawaing genetic engineering. Sa kasong ito, ang isang lugar ng pagtatrabaho para sa paghihiwalay ng DNA/RNA ay nakaayos sa silid, kung saan matatagpuan ang isang PCR box o biological safety box. Walang ibang uri ng trabaho ang pinapayagan sa PCR box para sa DNA/RNA isolation!
Sa lugar para sa paghahanda ng mga mixture ng reaksyon at pagsasagawa ng PCR maghanda ng PCR mixture, magdagdag ng nakahiwalay na DNA/RNA o cDNA na paghahanda sa isang PCR tube, baligtarin ang transkripsyon ng RNA at amplification ng DNA o cDNA. Ang silid para sa paghahanda ng mga mixture ng reaksyon at pagsasagawa ng PCR ay dapat na hiwalay. Ang paghahanda ng PCR reaction mixtures ay isinasagawa sa isang PCR box.
Kung kinakailangan, ang yugto ng paghihiwalay ng DNA/RNA ay maaaring pagsamahin sa isang silid na may yugto ng paghahanda ng mga paghahalo ng reaksyon at pagsasakatuparan ng PCR kung mayroong magkahiwalay na mga kahon ng PCR sa loob nito - para sa paghahanda ng mga mixture ng reaksyon ng PCR at para sa paghihiwalay ng DNA/RNA.
Detection zone para sa mga produkto ng amplification matatagpuan sa isang hiwalay na silid, kung maaari ay nilagyan ng PCR box. Kung kinakailangan na sabay-sabay na gamitin ang pamamaraan ng electrophoresis at ang paraan ng pagsusuri ng hybridization upang makita ang mga produkto ng amplification, ang isang hiwalay na lugar ng pagtatrabaho ay dapat na inilalaan sa silid ng pagtuklas para sa pagsusuri ng hybridization. Sa kasong ito, ang mga kagamitan at accessories para sa bawat uri ng pagtuklas ay minarkahan kaugnay ng bawat zone. Ang mga pipette at glassware na inilaan para sa electrophoresis ay hindi pinapayagang gamitin para sa hybridization analysis.
Ang mga desisyon sa pagpaplano at paglalagay ng mga kagamitan ay dapat tiyakin ang daloy ng paggalaw ng materyal na pinag-aaralan. Ang air exchange sa pagitan ng amplification product detection room at iba pang mga kuwarto ay dapat na ganap na alisin.
Ang laboratoryo ng PCR ay nilagyan ng suplay ng tubig, alkantarilya, kuryente at pag-init. Ang lahat ng mga silid ng laboratoryo ng PCR ay binibigyan ng sapat na natural at artipisyal na ilaw.
Kapag nagtatayo ng bago o muling pagtatayo ng mga kasalukuyang PCR laboratories, ang lugar ay nilagyan ng supply at exhaust o exhaust ventilation. Ang pagkakaiba sa presyon ng hangin sa mga silid ng laboratoryo ng PCR ay nakamit dahil sa mga pagkakaiba sa air exchange rate sa kanila. Ang air exchange rate ay dapat na tumutugma sa mga halagang ibinigay sa talahanayan:
Kung kinakailangan, maaaring i-install ang air conditioning sa PCR laboratory.
Ang panloob na dekorasyon ng mga lugar ay isinasagawa alinsunod sa kanilang layunin sa pagganap. Ang mga ibabaw ng mga dingding, sahig at kisame sa lugar ng laboratoryo ay dapat na makinis, walang mga bitak, madaling iproseso, at lumalaban sa mga detergent at disinfectant. Hindi dapat madulas ang mga sahig. Ang mga kasangkapan sa laboratoryo ay dapat may patong na lumalaban sa mga detergent at disinfectant. Ang ibabaw ng mga talahanayan ay hindi dapat magkaroon ng mga bitak o tahi. Ang mga lugar ng laboratoryo ay dapat na hindi maarok ng mga daga at mga insekto. Ang laboratoryo ng PCR ay binibigyan ng kagamitan sa pamatay ng sunog.
UROGENITAL CHLAMYDIOSIS
Materyal para sa pananaliksik Pag-scrape mula sa urethra o cervical canal, pagtatago ng prostate, sediment ng ihi. Sa mga bagong silang, ang mga scrapings mula sa conjunctiva ng mga mata at ang posterior wall ng pharynx ay ginagamit bilang materyal para sa pananaliksik. Sa mga batang babae, ang mga scrapings mula sa vulva ay ginagamit bilang materyal sa pananaliksik; sa mga lalaki, ginagamit ang ihi.
Paghahanda sa pasyente, pagkuha ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito 10 araw bago kunin ang materyal para sa pananaliksik, dapat mong ihinto ang pagkuha ng chemotherapy at mga pamamaraan ng paggamot.
Mga tampok ng pagkuha ng materyal mula sa yuritra
- bago kunin ang materyal, pinapayuhan ang pasyente na pigilin ang pag-ihi sa loob ng 1.5-2 na oras;
- kaagad bago kunin ang materyal, ang panlabas na pagbubukas ng urethra ay dapat tratuhin ng isang pamunas na moistened na may sterile saline solution;
- sa pagkakaroon ng purulent discharge, inirerekumenda na kumuha ng isang pag-scrape 15-20 minuto pagkatapos ng pag-ihi, sa kawalan ng paglabas, kinakailangang i-massage ang urethra gamit ang isang probe upang mangolekta ng materyal;
- sa mga kababaihan, bago ipasok ang isang probe sa yuritra, ito ay hagod sa pubic joint;
- Sa mga kababaihan, ang probe ay ipinasok sa urethra sa lalim ng 1.0-1.5 cm, sa mga lalaki - hanggang 3-4 cm, at pagkatapos ay ginawa ang ilang mga paikot na paggalaw; sa mga bata, ang materyal para sa pananaliksik ay kinuha lamang mula sa panlabas na pagbubukas ng urethra;
Mga tampok ng pagkuha ng materyal mula sa cervical canal
- bago kunin ang materyal, kinakailangang alisin ang uhog na may cotton swab at pagkatapos ay gamutin ang cervix na may sterile saline;
- ang probe ay ipinasok sa cervical canal sa lalim na 0.5-1.5 cm;
- kung may mga pagguho ng cervical canal, dapat silang tratuhin ng sterile saline, at ang materyal ay dapat kunin sa hangganan ng malusog at binagong tissue;
- kapag inaalis ang probe, kinakailangan upang ganap na maiwasan ang pakikipag-ugnay nito sa mga dingding ng puki;
Pagkatapos kunin ang materyal, ang probe ay ibinababa sa isang test tube na may "DNA-EXPRESS" transport medium. Matapos ipasok ang probe sa daluyan ng transportasyon, ito ay paikutin ng maraming beses at pagkatapos ay inalis mula sa tubo. Ang pansubok na tag ay sarado at may label. Kung ang oras ng transportasyon ng biological na materyal mula sa sandali ng koleksyon hanggang sa sandali ng paghahatid nito sa laboratoryo ay higit sa 2 oras, kung gayon ang test tube ay dapat na frozen sa -20 0 C. Ang transportasyon ng biological na materyal ay dapat isagawa lamang sa isang bag ng refrigerator. Ang frozen na biological na materyal ay maaaring maimbak nang hindi hihigit sa 2 linggo.
Mga tampok ng pagkuha ng mga pagtatago ng prostate
Bago kumuha ng mga pagtatago ng prostate, ang ulo ng ari ng lalaki ay ginagamot ng isang sterile cotton swab na binasa ng saline solution. Ang pagtatago ng prostate ay kinukuha pagkatapos ng paunang masahe ng prostate sa pamamagitan ng tumbong. Ang therapist ay nagsasagawa ng pressure massage gamit ang ilang masiglang paggalaw mula sa base hanggang sa tuktok. Pagkatapos ang prostatic secretion ay pinipiga mula sa cavernous na bahagi. Ang transportasyon ng biological na materyal ay dapat isagawa lamang sa isang cooler bag.
Mga tampok ng pagkuha (pagkolekta) ng ihi
Kinokolekta ang ihi sa umaga sa isang walang laman na tiyan pagkatapos matulog o hindi mas maaga kaysa sa 2-3 oras pagkatapos ng huling pag-ihi. Umaga ihi settles para sa 1 oras, pagkatapos ay maingat na drains, nag-iiwan lamang sa ilalim na bahagi - tungkol sa 10 ML. Ang nalalabi na ito ay ibinubuhos sa isang centrifuge tube at ini-centrifuge. Pagkatapos ang supernatant na likido ay pinatuyo muli, at ang sediment (walang likido) ay inilipat gamit ang isang probe sa isang PCR tube.
Ang ihi ay hindi dapat palamigin o i-freeze hanggang sa makuha ang sediment.
Mga tampok ng pagkuha ng materyal mula sa likod ng lalamunan
Ang isang disposable probe ay ipinasok sa likod ng malambot na palad sa nasopharynx at ipinapasa sa likod ng dingding ng pharynx. Pagkatapos kunin ang materyal, ang probe ay ibinababa sa isang test tube na may "DNA-EXPRESS" transport medium. Matapos ipasok ang probe sa daluyan ng transportasyon, ito ay paikutin ng maraming beses at pagkatapos ay inalis mula sa tubo. Ang tubo ay sarado at may label. Kung ang oras ng transportasyon ng biological na materyal mula sa sandali ng koleksyon hanggang sa sandali ng paghahatid nito sa laboratoryo ay higit sa 2 oras, kung gayon ang tubo ay dapat na frozen sa -200C. Ang transportasyon ng biological na materyal ay dapat isagawa lamang sa isang cooler bag. Ang frozen na biological na materyal ay maaaring maimbak nang hindi hihigit sa 2 linggo.
Mga tampok ng pagkuha ng materyal mula sa conjunctiva ng mga mata
Kung mayroong masaganang purulent discharge, ito ay aalisin gamit ang isang sterile cotton swab na moistened sa saline solution. Ang isang pag-scrape ay kinuha mula sa panloob na ibabaw ng ibabang talukap ng mata na lumilipat patungo sa panloob na sulok ng palpebral fissure. Kapag kumukuha ng isang scraping, dapat mong hawakan ang talukap ng mata gamit ang iyong mga kamay upang kapag kumurap ka, ang mga pilikmata ay hindi hawakan ang probe.
Pagkatapos kunin ang materyal, ang probe ay ibinababa sa isang test tube na may "DNA-EXPRESS" transport medium. Matapos ipasok ang probe sa daluyan ng transportasyon, ito ay paikutin ng maraming beses at pagkatapos ay inalis mula sa tubo. Ang test tube ay mahigpit na nakasara. Kung ang oras ng transportasyon ng biological na materyal mula sa sandali ng koleksyon hanggang sa sandali ng paghahatid nito sa laboratoryo ay higit sa 2 oras, kung gayon ang tubo ay dapat na frozen sa -200C. Ang transportasyon ng biological na materyal ay dapat isagawa lamang sa isang cooler bag. Ang frozen na biological na materyal ay maaaring maimbak nang hindi hihigit sa 2 linggo.
UROGENITAL MYCOPLASMOSIS
Materyal para sa pananaliksik Paglabas ng urethra, puki, cervical canal, ihi (centrifuge ng umaga una at gitnang bahagi), prostate secretion, tamud.
Mga tampok ng pagkuha ng materyal mula sa puki
Ang materyal ay dapat kunin bago magsagawa ng manu-manong pagsusuri. Bago ang pagmamanipula, ang salamin ay maaaring basa-basa ng mainit na tubig, ang paggamit ng mga antiseptiko para sa paggamot sa salamin ay kontraindikado. Kinokolekta ang vaginal discharge gamit ang isang sterile disposable probe mula sa posterior inferior fornix o mula sa pathologically changed areas ng mucosa at inilagay sa isang test tube na may transport medium na "DNA-EXTPESS". Sa mga batang babae, ang materyal ay kinuha mula sa mauhog lamad ng vaginal vestibule, at sa ilang mga kaso - mula sa posterior vaginal fornix sa pamamagitan ng hymenal rings. Matapos ipasok ang probe sa daluyan ng transportasyon, ito ay paikutin ng maraming beses at pagkatapos ay inalis mula sa tubo. Ang tubo ay sarado at may label. Kung ang oras ng transportasyon ng biological na materyal mula sa sandali ng koleksyon hanggang sa sandali ng paghahatid nito sa laboratoryo ay higit sa 2 oras, kung gayon ang tubo ay dapat na frozen sa -200C. Ang transportasyon ng biological na materyal ay dapat isagawa lamang sa isang cooler bag. Ang frozen na biological na materyal ay maaaring maimbak nang hindi hihigit sa 2 linggo.
GONORRHEA
Materyal para sa pananaliksik Paglabas ng urethra, cervical canal, pagtatago ng prostate, sediment ng ihi.
Paghahanda ng pasyente, koleksyon ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito Tingnan ang urogenital chlamydia.
10 araw bago kumuha ng materyal para sa pagsasaliksik, dapat mong ihinto ang pagkuha ng mga gamot sa chemotherapy at mga pamamaraan ng paggamot. Ang materyal para sa pananaliksik sa mga kababaihan ay dapat kunin bago ang regla o 1-2 araw pagkatapos nito. Bago kunin ang materyal, dapat mong pigilin ang pag-ihi sa loob ng 3-4 na oras at mula sa pakikipagtalik. Ang mga kababaihan sa bisperas ng pagsusuri ay hindi dapat magsagawa ng toileting ng panlabas na genitalia at douching. Ang materyal na sinusuri ay dapat na walang dugo. Ang malayang dumadaloy na urethral secretions ay hindi dapat kunin para sa pagsusuri. Ang pagtatago ng prostate ay dapat kunin lamang pagkatapos ng pagtatapos ng mga talamak na sintomas ng prostatitis. Para sa tamad at talamak na gonorrhea, isang provocation ay dapat isagawa bago ang pag-aaral.
Mga paraan ng provocation para sa gonorrhea:
- biological: pangangasiwa ng gonovaccine (500 milyong microbial na katawan) sa mga matatanda nang isang beses, intramuscularly, para sa mga bata na higit sa 3 taong gulang - 100-200 milyong microbial na katawan; Ang pangangasiwa ng gonovaccine ay hindi inirerekomenda para sa mga batang wala pang 3 taong gulang;
- thermal: gamitin para sa 3 araw ng diathermy na may abdominal-vaginal-sacral arrangement ng mga electrodes sa loob ng 30, 40, 50 minuto o inductothermy sa loob ng 10, 15, 20 minuto; Pinakamainam na kumuha ng materyal mula sa urethra at cervical canal 1 oras pagkatapos ng bawat warm-up;
- mekanikal: paglalagay ng metal cap sa cervix ng mga kababaihan sa loob ng 4 na oras, pagsasagawa ng urethral massage sa mga lalaki sa isang bougie sa loob ng 10 minuto;
- nutritional: pagkonsumo ng maaalat, maanghang na pagkain at alkohol 24 oras bago ang pagsubok.
Ang materyal ay kinuha pagkatapos ng provocation at pagkatapos ng 24-48-72 na oras.
Upang makuha ang pinaka-maaasahang resulta, kinakailangan ang paulit-ulit na pag-aaral.
TRICHOMONIASIS
Materyal para sa pananaliksik Paglabas mula sa urethra (sa mga lalaki), ari, pagtatago ng prostate.
Paghahanda ng pasyente, koleksyon ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito Tingnan ang urogenital chlamydia, urogenital mycoplasmosis.
TUBERCULOSIS (mga extrapulmonary localization)
Materyal para sa pananaliksik: Ihi, smears mula sa cervical canal, urethra.
Paghahanda sa pasyente, pagkuha ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito 10 araw bago kunin ang materyal para sa pananaliksik, dapat mong ihinto ang pagkuha ng chemotherapy at mga pamamaraan ng paggamot. Tingnan ang urogenital chlamydia.
MGA SAKIT SA RESPIRATORY NA KASAMA SA Mycoplasma pneumoniae
Materyal para sa pananaliksik Nasopharyngeal swab.
Mga tampok ng pagkuha ng smear mula sa nasopharynx Ang isang smear ay kinuha sa walang laman na tiyan o hindi mas maaga kaysa sa 2-4 na oras pagkatapos kumain. Kapag kumukuha ng materyal, kinakailangan ang mahusay na pag-iilaw, ang pasyente ay nakaupo laban sa pinagmumulan ng liwanag, ang ugat ng dila ay pinindot ng isang spatula, ang materyal ay kinuha gamit ang isang sterile probe nang hindi hinahawakan ang dila, buccal mucosa at ngipin at ibinaba sa isang pagsubok tube na may "DNA-EXPRESS" transport medium. Pagkatapos kunin ang materyal, ang probe ay ibinababa sa isang test tube na may "DNA-EXPRESS" transport medium. Matapos ipasok ang probe sa daluyan ng transportasyon, ito ay paikutin ng maraming beses at pagkatapos ay inalis mula sa tubo. Sarado ang test tube. Kung ang oras ng transportasyon ng biological na materyal mula sa sandali ng koleksyon hanggang sa sandali ng paghahatid nito sa laboratoryo ay higit sa 2 oras, kung gayon ang tubo ay dapat na frozen sa -200C. Ang transportasyon ng biological na materyal ay dapat isagawa lamang sa isang cooler bag. Ang frozen na biological na materyal ay maaaring maimbak nang hindi hihigit sa 2 linggo.
MGA GASTRODUODENAL DISEASES (kabag, gastric o duodenal ulcer) NA KAUBAN SA Helicobacter pylori
Materyal para sa pananaliksik Mga biopsy ng antrum ng tiyan, mga biopsy ng duodenum, mga biopsy ng gilagid, mga pahid mula sa periodontal pocket.
Mga tampok ng pagkuha ng biopsy material
Kinukuha ang biopsy material sa panahon ng endoscopic examination. Bago simulan ang anti-Helicobacter pylori therapy, isang biopsy sample ang kinuha mula sa antrum ng tiyan. Kapag sinusubaybayan ang paggamot, ang isang biopsy sample ay kinuha nang hindi mas maaga kaysa sa 4 na linggo pagkatapos ng anti-Helicobacter therapy mula sa katawan ng tiyan. Ang biopsy sample na kinuha ay inilalagay sa isang sterile, tuyong Eppendorf tube at agad na dinala sa laboratoryo. Para sa mas mahabang imbakan, posibleng i-freeze ang biopsy material na kinuha sa temperatura na -20 0 C.
Mga tampok ng pagkuha ng mga sample ng biopsy ng gilagid, smears mula sa periodontal pocket at laway
Ang biopsy na materyal mula sa gilagid, smears mula sa periodontal pocket at laway ay kinuha mula sa mga pasyente na may kasaysayan ng gastroduodenal pathology at ang pagkakaroon ng gingivitis at periodontal disease.
Ang biopsy sample na kinuha ay inilalagay sa isang sterile, tuyong Eppendorf tube at agad na dinala sa laboratoryo. Para sa mas mahabang imbakan, posibleng i-freeze ang biopsy material na kinuha sa temperatura na -20 0 C.
Ang mga pahid mula sa periodontal pocket ay kinokolekta sa isang sterile Eppendorf tube na may saline solution. Sa kasong ito, ang mga test tube ay maaaring maimbak sa refrigerator (+4 0 C - +6 0 C) nang hindi hihigit sa 12 oras, at sila ay dinadala sa isang cooler bag.
VIRAL IMPECTIONS
Herpes Simplex virus II; Citomegalovirus; H. papiloma virus 16, 18
Materyal sa pagsubok - smears
Para sa mga impeksyon sa herpetic, ang mga scrapings ay pinakamahusay na kinuha mula sa mga sugat sa ari (vesicles, ulcers). Sa kawalan ng mga genital lesyon, ang isang scraping ay kinuha mula sa cervical canal. Kapag nag-diagnose ng impeksyon sa cytomegalovirus, ang materyal para sa pananaliksik ay maaaring isang pahid mula sa likod ng lalamunan, mga scrapings mula sa ari, urethra at cervical canal, laway, at cerebrospinal fluid. Kapag nag-diagnose ng impeksyon sa papillomavirus ng tao, ang materyal para sa pananaliksik ay maaaring maging isang pahid mula sa nasopharynx, mula sa conjunctiva ng mata, pag-scrape mula sa cervical canal, cervix, i.e. mauhog lamad (non-keratinized epithelium).
Koleksyon ng biyolohikal na materyal Ang pagkolekta ng biyolohikal na materyal ay dapat, kung maaari, isagawa sa panahon ng paglala ng impeksiyon. Tingnan ang urogenital chlamydia, urogenital mycoplasmosis.
Herpes Simplex virus I; Herpes Simplex virus II; Herpes Simplex virus VI
Citomegalovirus; Epstein Barr virus
Materyal sa pagsubok Katutubong dugo.
Paghahanda sa pasyente, pagkuha ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito Maipapayo na kumuha ng dugo para sa pagsusuri sa walang laman na tiyan.
Ang venous blood sa halagang 1-1.5 ml ay nakolekta sa isang sterile 1.5 ml Eppendorf tube na may EDTA solution. Ang isang tubo ng dugo ay maaaring maimbak sa refrigerator (+4 0 C - +6 0 C) nang hindi hihigit sa 24 na oras. Huwag i-freeze ang test tube. Ang pag-aaral ay isasagawa mula sa plasma at mga selula ng dugo.
HBV-DNA; Pagpapasiya ng konsentrasyon ng HBV-DNA sa pamamagitan ng mapagkumpitensyang PCR
HCV-RNA (semiquantitative assessment) + anti-HCV; HCV-RNA na may pagpapasiya ng HCV+ anti-HCV genotype; Hepatitis G; TTV-DNA
Materyal sa pagsubok: Serum ng dugo.
Paghahanda sa pasyente, pagkuha ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito Para sa pagkuha ng venous blood at paghahanda ng serum, tingnan ang seksyon sa pagtukoy ng konsentrasyon ng mga hormone gamit ang ELISA. Ang serum na walang anumang admixture ng mga pulang selula ng dugo ay dapat masuri. Kung kinakailangan na mag-imbak ng sample ng dugo sa ilalim ng pag-aaral nang mahabang panahon (para lamang sa hepatitis B, C, G), kinakailangang kumuha ng 1 ml ng serum o plasma ng dugo at iimbak ito sa temperatura na -20 0 C para sa hindi hihigit sa 2 linggo.
KOMPREHENSIVE NA PAG-AARAL PARA SA BACTERIAL VAGINOSIS
Materyal sa pagsubok: Mga pahid mula sa posterior inferior vaginal fornix.
Para sa isang komprehensibong diagnosis ng bacterial vaginosis ito ay kinakailangan:
Kumuha ng scraping ng mga epithelial cell mula sa posterior o lateral vaginal vault papunta sa isang hiwalay na disposable glass slide, lagyan ng label at patuyuin ito. Mag-imbak ng salamin sa temperatura ng silid.
Alisin ang mucus at kumuha ng pag-scrape ng mga epithelial cell mula sa posterior o lateral vaginal fornix gamit ang isang disposable cervix brush type probe sa isang PCR tube na may reagent na "DNA-EXPRESS". Itago ang tubo sa freezer sa minus 20°C hanggang 10 araw.
Ipadala ang slide at PCR tube sa laboratoryo ng "Litekh" na may kumpletong order.
Koleksyon ng biological na materyal at mga kondisyon para sa transportasyon nito
Tingnan ang mga detalye ng pagkuha ng materyal mula sa puki para sa cytological at PCR studies.
Ang pagpili ng klinikal na materyal ay isinasagawa ng mga medikal na tauhan bilang pagsunod sa mga patakaran ng rehimeng anti-epidemya, sa pamamagitan lamang ng mga sterile na disposable na instrumento (mga syringe, naaangkop na probes, cytobrushes, atbp.), Nakasuot ng disposable gloves.
Kolektahin ang materyal mula sa napiling locus nang ganap hangga't maaari, gamit ang angkop na mga applicator - probes, cytobrushes (tiyakin ang kasapatan ng klinikal na sample).
Panatilihin ang nakuhang materyal (DNA/RNA ng mga microorganism) gamit ang maaasahang transport media at mga preservative na ibinigay ng PCR laboratory. Tinitiyak ng daluyan para sa transportasyon at pag-iimbak ng klinikal na materyal ang katatagan ng RNA at DNA sa temperatura ng silid hanggang sa 28 araw.
Ilagay ang nakolektang materyal sa mga vacuette na may EDTA (dugo), sa mga disposable chemically pure Eppendorf tubes (smears, cerebrospinal fluid, biopsy, atbp.). Ang pangunahing kondisyon kapag nangongolekta ng materyal ay upang maiwasan ang mga DNAases at ribonucleases na makapasok sa sample, dahil Ang Ribonucleases at DNAases ay mga enzyme para sa pagkasira ng RNA at DNA. Ang mga ito ay lubhang matatag sa kapaligiran at makatiis ng matagal na pagkulo. Ang pangunahing pinagmumulan ng mga nucleases ay ang mga particle ng balat at alikabok. Ang mga plastik na tubo at mga tip ay dapat na may label na "DNase, RNase-free."
Kaagad pagkatapos ng koleksyon, mahigpit na isara ang mga tubo at bote na may klinikal na materyal nang hindi hinahawakan ang kanilang panloob na ibabaw o ang panloob na ibabaw ng mga takip.
Kapag nagtatrabaho sa klinikal na materyal, kapag binubuksan ang mga test tube, vial, huwag gumawa ng biglaang paggalaw at maiwasan ang pag-splash at splashing, na maaaring humantong sa kontaminasyon ng mga sample at gumaganang ibabaw.
Upang maiwasan ang magkaparehong kontaminasyon, mag-imbak at magdala ng mga sample sa isang hiwalay na plastic bag o rack. Kung kinakailangan ang paglipat ng sample, gumamit ng mga awtomatikong micropipettes na may mga napapalitang disposable tip na may mga aerosol barrier.
Bago dalhin sa laboratoryo ng PCR, ang napiling biomaterial ay dapat na nakaimbak sa temperatura na 2–4 °C nang hindi hihigit sa 48 oras. Kinakailangang bawasan ang oras mula sa pagkolekta ng sample hanggang sa pagsusuri ng PCR. Ang transportasyon ng mga sample ay isinasagawa sa mga cooler bag, thermal container, thermoses na may thermal bag, yelo o tuyong yelo.
Dugo, plasma, suwero
Inirerekomenda na mangolekta ng dugo gamit ang mga sistema ng vacuum. Ang pagpapakilala ng naturang mga sistema ay ginagawang posible na i-standardize ang mga manipulasyon sa dugo, ay may positibong epekto sa lahat ng mga yugto ng pananaliksik sa laboratoryo at, sa pangkalahatan, inililipat ang gawain ng laboratoryo sa ibang, mas mataas na antas ng kalidad. Ang kanilang paggamit ay ginagarantiyahan ang proteksyon ng mga tauhan mula sa impeksyon, binabawasan ang oras na ginugol sa pag-sample ng dugo, ay mas maliit na malamang na sinamahan ng hemolysis, at pinapayagan ang mga sample ng dugo na panatilihing sterile at transported hermetically.
Inirerekomenda na magsagawa ng venipuncture sa isang walang laman na tiyan mula sa ulnar vein papunta sa isang espesyal na vacuum tube na may isang anticoagulant, pagkatapos kung saan ang tubo ay baligtad para sa paghahalo ng maraming beses. Ang mga tubo na may dugo ay iniimbak sa refrigerator sa +4 °C – +8 °C. Ang maximum na shelf life ng dugo ay 1 araw (huwag mag-freeze!). Kung kinakailangan ang pangmatagalang imbakan, kinakailangang kumuha ng 1 ml ng serum o plasma ng dugo at iimbak ito sa temperatura na -16 o -20 o C nang hindi hihigit sa 2 linggo.
Mga katangian ng mga vacuum system na ginagamit para sa PCR diagnostics:
Mga vacuette na may EDTA (6%) - ginagamit para sa qualitative at quantitative na pananaliksik. Ang EDTA anticoagulant ay maayos na nag-aayos ng mga cell nucleic acid.
Mga vacuette na may sodium citrate (3.8%) - ginagamit para sa qualitative at quantitative na pananaliksik. Hindi angkop para sa pangmatagalang transportasyon, dahil Ang citrate ay isang magandang nutrient medium para sa dayuhang microflora.
Mga vacuette na walang anticoagulants (blood serum) - ginagamit para sa qualitative research. Ang paggamit ng serum ng dugo para sa dami ng pag-aaral ay hindi kanais-nais, dahil bahagi ng nakakahawang ahente ay naninirahan sa namuong dugo, sa gayon binabawasan ang posibilidad na matukoy ang dami ng nilalaman nito sa dugo.
Ang mga vacuette na may heparin ay ganap na hindi angkop para sa mga reaksyon ng PCR. Ang Heparin ay isang polyanion, tulad ng DNA, at samakatuwid ay nakikipagkumpitensya sa DNA sa reaksyon ng PCR.
Mga tagubilin para sa pagkolekta, pag-iimbak at transportasyon
biological na materyal para sa pananaliksik sa laboratoryo
Ang biyolohikal na materyal ay dapat na may label na mga tubo (mga lalagyan) at sinamahan ng isang kumpletong indibidwal na referral form sa isang kopya. Kinakailangang maingat at malinaw na punan ang referral, na nagsasaad ng sumusunod na impormasyon: petsa, numero ng test tube, pangalan ng pasilidad ng pangangalagang pangkalusugan na nagpadala ng biomaterial para sa pagsusuri, pangalan ng doktor na nangongolekta ng materyal; Buong pangalan, edad at kasarian ng pasyente, paunang pagsusuri; sa panahon ng pagbubuntis - gestational age. Pagtanggap ng biological na materyal: Mga pagsusuri sa dugo ng PCR at immunochemical- Kasama 09:00 dati 18:00 maliban sa katapusan ng linggo at pista opisyal. Pag-aaral sa bakterya- Kasama 09:00 dati 11:00 maliban sa Biyernes, katapusan ng linggo, pre-holiday at pampublikong holiday. |
para sa pagtukoy ng mga pathogen gamit ang PCR method
1.1.1. Ang biomaterial ay kinuha mula sa pinaghihinalaang tirahan ng mga microorganism at ang pagbuo ng impeksyon.
1.1.2. Ang dami ng materyal na nakolekta ay dapat maliit. Ang sobrang discharge, mucus at nana ay negatibong nakakaapekto sa kalidad ng pagkuha ng DNA at nakakatulong sa pagkasira ng DNA sa panahon ng pag-iimbak at transportasyon.
1.1.3. Kapag ipinapasok ang biomaterial na kinuha mula sa isang pasyente na may probe na may cotton swab o brush sa isang Eppendorf tube na may buffer solution, kinakailangan:
Panatilihin ang sterility;
Bago ilubog ang biomaterial na nakolekta sa pamunas (brush) sa solusyon, ipahid ito sa tuyong dingding ng test tube, pagkatapos ay basain ang pamunas (brush) sa solusyon at, paikutin ang probe, banlawan nang lubusan ang lahat ng materyal mula sa pader ng test tube at ang pamunas (brush);
Kung maaari, idikit ang pamunas sa dingding ng test tube, tanggalin ang probe gamit ang pamunas (brush) at isara ang test tube.
1.2. Mga pamamaraan para sa pagkolekta ng biomaterial para sa PCR research
1.2.1. Mga scrapings. Para sa mga scrapings, ang mga disposable sterile probes na may cotton swab na may mas mataas na adsorption o "brushes" ay ginagamit, mas madalas - Volkmann spoons, maliit na ear spoons o katulad na mga instrumento na may bahagyang blunted na mga gilid. Gamit ang mga paggalaw ng pag-scrape, kolektahin ang materyal. Ang materyal sa ilalim ng pag-aaral ay dapat maglaman ng pinakamalaking posibleng bilang ng mga epithelial cell at isang minimum na halaga ng mucus, dugo at exudate. Idagdag ang materyal sa isang sterile Eppendorf tube na may buffer solution (tingnan ang seksyon 1.1.).
Pag-scrape mula sa cervical canal: Bago kumuha ng isang scraping, kinakailangan upang alisin ang labis na uhog na may sterile cotton swab at gamutin ang cervix na may sterile saline. Ipasok ang probe sa cervical canal sa lalim na 0.5-1.5 cm, iwasan ang pagkakadikit sa mga dingding ng ari, at kolektahin ang materyal na may kilusan ng pag-scrape (hindi hanggang sa may dugo). Ang isang maliit na bilang ng mga pulang selula ng dugo sa sample ay hindi nakakaapekto sa resulta ng pagsusuri. Sa pagkakaroon ng cervical erosion, ang materyal ay kinuha mula sa hangganan ng malusog at binagong tissue.
Pag-scrape ng urethral: ipasok ang probe sa urethra (sa mga lalaki - sa lalim ng 2-4 cm) at kolektahin ang materyal na may ilang mga paikot na paggalaw. Ang araw bago kunin ang materyal, pinahihintulutan ang provocation (maanghang na pagkain, alkohol, atbp.). Inirerekomenda na pigilin ang pag-ihi sa loob ng 1-2 oras bago kunin ang sample. Kung mayroong mabigat na purulent discharge, ang pag-scrape ay dapat gawin nang hindi lalampas sa 15 minuto pagkatapos ng pag-ihi.
Pag-scrape ng conjunctival kinuha pagkatapos anesthetizing ang mata na may 0.5% dicaine solution. Matapos maalis ang talukap ng mata, gumamit ng probe na may cotton swab (o scalpel sa mata) upang mangolekta ng mga epithelial cell mula sa conjunctiva.
Pag-scrap sa tumbong: Ipasok ang probe sa anus sa lalim na 3-4 cm at kolektahin ang materyal na may paikot na paggalaw.
1.2.2. Mga stroke. Gamit ang disposable sterile probe na may cotton swab o brush, kumuha ng kaunting discharge (mula sa vaginal vault, pharynx, nasopharynx, atbp.) at ilipat ito sa sterile Eppendorf tube na may buffer solution (tingnan ang seksyon 1.1.).
1.2.3. Dugo. Para sa pag-aaral ng PCR, ang dugo ay dapat katutubo(hindi kulot).
Kolektahin ang dugo nang aseptiko, sa pamamagitan ng venipuncture, sa isang proprietary test tube (2-3 ml) na may EDTA anticoagulant ( Ang Heparin ay hindi maaaring gamitin bilang isang anticoagulant!), ihalo nang malumanay, dahan-dahang ipihit ang test tube.
Ang dugo na may EDTA ay isang biomaterial para sa mga sumusunod na grupo ng pag-aaral:
- genetic na pananaliksik(hindi mahalaga ang sandali ng pag-sample ng dugo).
- pagkakakilanlan ng mga nakakahawang ahente(ang pinaka-kaalaman ay ang mga sample na kinuha sa panahon ng panginginig, lagnat, ibig sabihin, marahil sa panahon ng viremia o bacteremia).
1.2.4. Ihi. Kolektahin ang una o kalagitnaan ng umaga na ihi sa halagang hindi bababa sa 10 ml sa isang walang laman na sterile na lalagyan na may mahigpit na naka-screwed na takip. Kung ang pagkolekta ng ihi ay isinasagawa sa araw, pagkatapos ay bago ito ang pasyente ay hindi dapat umihi sa loob ng 1.5-3 na oras.
1.2.5. plema. Sa umaga, i-sanitize ang bibig at lalamunan (banlawan ng solusyon ng baking soda). Kolektahin ang plema sa isang walang laman, sterile, malawak na bibig na bote.
1.2.6. Biopsy. Ang materyal ay kinuha mula sa lugar kung saan ang nakakahawang ahente ay dapat na matatagpuan, mula sa nasira tissue o ang lugar na karatig ng pinsala. Ilagay ang biopsy sample sa isang sterile Eppendorf tube na may buffer solution.
1.2.7. Laway, gastric juice, cerebrospinal fluid, synovial fluid. Laway (1-5 ml), gastric juice (1-5 ml), cerebrospinal fluid (1-1.5 ml) - ilagay sa isang walang laman na sterile tube (lalagyan).
1.2.8. Katas ng prostate. Pagkatapos ng masahe ng prostate gland, ang juice ay nakolekta sa isang halaga ng 0.5-1 ml sa isang walang laman na sterile tube (lalagyan). Kung imposibleng makakuha ng juice, kaagad pagkatapos ng masahe, kolektahin ang unang bahagi ng ihi sa halagang hindi hihigit sa 10 ml (ang bahaging ito ay naglalaman ng prostate juice).
1.2.9. Mga paghuhugas, bronchoalveolar lavage (BAL). Ang isang sterile cotton swab at 5-7 ml ng physiological solution ay ginagamit upang banlawan, halimbawa, mula sa dulo ng isang endoscope o bronchoscope, at ilagay ang 0.5-5 ml ng banlawan sa isang walang laman na sterile tube (lalagyan).
1.2.10. Mga dumi. Ang isang probe na may cotton swab ay inilalagay sa loob ng dumi at bahagyang lumiko, na kumukuha ng isang maliit na halaga ng materyal. Ang materyal ay pagkatapos ay ilagay sa isang sterile Eppendorf tube na naglalaman ng isang buffer solution.
1.3. Mga panuntunan para sa pag-iimbak ng biological na materyal para sa PCR research
1.3.1. Mga pahid, mga scrapings:
Sa refrigerator (+4ºС - +8ºС) hanggang sa 7 araw;
Sa freezer (-20ºС) hanggang sa 14 na araw (isang beses lang na defrosting ang pinapayagan!).
1.3.2. Ihi: sa refrigerator (+4ºС - +8ºС) hindi hihigit sa 1 araw;
1.3.3. Dugo na may EDTA: sa refrigerator (+4ºС - +8ºС) - upang matukoy ang mga nakakahawang ahente - hindi hihigit sa 1 araw; para sa genetic research - hanggang 4 na araw. Hindi maaaring i-freeze.
1.3.4. plema
1.3.5. Mga biopsy:
Sa kompartimento ng refrigerator (+4ºС - +8ºС) hindi hihigit sa 1 araw,
Sa freezer (-20ºС) hanggang 2 linggo.
1.3.6. Katas ng prostate: sa refrigerator (+4ºС - +8ºС) nang hindi hihigit sa 1 araw.
1.3.7. Synovial fluid: sa refrigerator (+4ºС - +8ºС) nang hindi hihigit sa 1 araw.
2. Mga panuntunan para sa pagkolekta, pag-iimbak at pagdadala ng dugo
para sa immunochemical studies
2.1.1. Sa bisperas ng pagkolekta ng dugo, iwasan ang pisikal na aktibidad, mga nakababahalang sitwasyon, mga pamamaraan ng physiotherapeutic, pag-inom ng mga gamot (maliban sa mga kaso ng gamot na inireseta ng doktor), mga oral contraceptive, pag-inom ng mga inuming nakalalasing at mataba na pagkain. Huwag manigarilyo kaagad bago ang pagsusulit.
2.1.2. Kapag pinag-aaralan ang pag-andar ng thyroid gland sa panahon ng paggamot sa mga gamot na naglalaman ng mga thyroid hormone, ang pag-aaral ay isinasagawa 24 na oras pagkatapos ng huling dosis ng gamot; 2-3 araw bago kumuha ng dugo, iwasan ang pag-inom ng mga gamot na naglalaman ng iodine.
2.1.3. Kapag nag-aaral ng PSA isang linggo bago ang pagsusulit, ibukod ang anumang pagmamanipula ng prostate gland.
2.1.4. Ang dugo ay kinuha sa umaga, sa walang laman na tiyan (upang maiwasan ang chylosis, i.e. labo ng suwero), sa ilalim ng mga kondisyon ng physiological rest. Bago ang koleksyon ng dugo, ang pasyente ay dapat bigyan ng 15 minutong pahinga.
2.1.5. Kinukuha ang dugo sa silid ng paggamot ng pasilidad ng pangangalagang pangkalusugan, kung saan ang pasyente ay nasa posisyong "nakaupo" o "nakahiga", mula sa ulnar vein bilang pagsunod sa mga patakaran ng asepsis at antisepsis. Kinokolekta ang dugo sa isang sterile tube, monovet syringe o sistema ng pagkolekta ng dugo (Vacutainer®, Vacuette®).
2.1.6. Upang makakuha ng serum, ang venous blood ay pinapayagang tumira hanggang sa ito ay ganap na mamuo. Matapos ang pagbuo ng isang fibrin clot, ang huli ay pinaghihiwalay mula sa mga dingding na may isang sterile glass rod, mahigpit na indibidwal para sa bawat sample, ang tubo ay nakasentro sa 3000 rpm sa loob ng 15 minuto * .
* Ang mga monovet syringe at mga sistema ng pagkolekta ng dugo (Vacutainer®, Vacuette®) ay sentripuges nang walang paunang manipulasyon.
2.1.7. Ang dilaw na supernatant (serum) ay maingat na pini-pipet sa isang walang laman na nakatakip na tubo (5 ml).
2.2. Mga panuntunan para sa pag-iimbak ng dugo at serum para sa immunochemical studies
2.2.1. SAantas: sa refrigerator (+40C - +80C) sa loob ng 1 araw.
2.2.2.Serumdugo:
Sa refrigerator sa temperatura na +40C - + 80C sa loob ng 4 na araw;
Sa freezer sa -200C sa loob ng 2 linggo.
Isang defrosting lang ang pinapayagan!
PANSIN! Ang paksa ng pagsusuri ay serum na hindi naglalaman ng mga admixture ng mga pulang selula ng dugo, paglaki ng bakterya, chyle, o hemolysis. Kung ang alinman sa mga palatandaang ito ay naroroon, ang suwero ay nawasak at ang isang paulit-ulit na pagbunot ng dugo ay inireseta.
2.3. Mga panuntunan para sa pagkolekta at pag-iimbak ng dugo para sa pagsusuri ng lupus anticoagulant
At pag-aaral ng coagulation
2.3.1. Ang dugo ay kinuha sa umaga sa isang walang laman na tiyan mula sa ulnar vein, na sinusunod ang mga patakaran ng asepsis at antisepsis sa araw ng pag-aaral. Upang maiwasan ang pag-activate ng pamumuo ng dugo, ang vein compression ay hindi dapat lumampas sa 1 minuto .
2.3.2. Kung ang pag-aaral ay inireseta habang umiinom ng mga gamot na nakakaapekto sa pamumuo ng dugo, dapat itong tandaan sa referral.
2.3.3. Ang dugo ay kinokolekta sa isang espesyal na tubo na naglalaman ng sodium citrate, sa marka. Ang pagkabigong sumunod sa panuntunang ito ay nagbabago sa ratio ng dugo/anticoagulant, na maaaring makaapekto sa katumpakan ng resulta.
2.3.4. Sa loob ng 1 oras pagkatapos gumuhit ng dugo, ang tubo ay dapat na sentripuged sa 3000 rpm sa loob ng 15 minuto.
2.3.5. Imbakan ng plasma: hanggang 6 na oras sa temperatura na +40C - +80C o hanggang 2 linggo sa temperatura na -200C.
2.4. Mga panuntunan para sa pagkolekta at pag-iimbak ng dugo para sa pag-aaral ng glycated (glycosylated) hemoglobin
2.4.1. Ang dugo ay kinuha sa umaga sa walang laman na tiyan mula sa ulnar vein, na sinusunod ang mga patakaran ng asepsis at antiseptics.
2.4.2. Ang dugo ay kinokolekta sa isang espesyal na tubo na naglalaman ng EDTA at hinahalo nang maayos. Huwag centrifuge!
2.4.3. Paghahatid sa Laboratory sa araw ng koleksyon ng dugo.
2.4.4. Imbakan: hanggang 2 linggo sa -200C.
2.5. Mga panuntunan para sa pagsusuri sa prenatal
2.5.1. Pinakamainam na oras ng pag-aaral: I trimester - 10-13 linggo ng pagbubuntis; II trimester - 16-18 na linggo ng pagbubuntis.
2.5.2. Kapag nagpapadala para sa isang pag-aaral, isang espesyal na direksyon ang pinupunan, kung saan kinakailangang ipahiwatig ang indibidwal na data ng buntis: edad (araw/buwan/taon), timbang, mga resulta ng ultrasound (CTR, BPR, bilang ng mga fetus, edad ng gestational ayon sa ultrasound (linggo + araw); kung magagamit - data sa laki ng cervical fold - NT) na may obligadong indikasyon ng petsa ng ultrasound at ang pangalan ng doktor na nagsagawa ng ultrasound; ang pagkakaroon ng karagdagang mga kadahilanan ng panganib (paninigarilyo, diabetes, IVF), etnisidad.
2.5.3. Upang mag-screen para sa ikalawang trimester ng pagbubuntis, maaari mong gamitin ang data ng ultrasound na ginawa sa unang trimester.
3. Mga panuntunan para sa pagkuha, pag-iimbak at pagdadala ng biomaterial
para sa bacteriological research
3.1. Ang biomaterial ay kinukuha bago mag-apply ng isang kurso ng antibacterial therapy o hindi bababa sa isang linggo pagkatapos nito makumpleto.
3.2. Upang maiwasan ang kontaminasyon ng sample ng mga mikroorganismo mula sa panlabas na kapaligiran, ang kinuhang biomaterial ay inililipat sa isang walang laman na lalagyan o test tube na may transport medium alinsunod sa mga pamantayan ng sterility rules: ang stopper ng test tube (container) ay binuksan/sarado kaya na ang loob ng takip ay nananatiling sterile; ang mga sterile na lalagyan ay hindi mananatiling bukas nang matagal.
3.3. Pagkuha ng biomaterial para sa pagkakakilanlan mycoplasmas at ureaplasmas, trichomonas, gonococci, hindi tiyak na microflora, mga kultura ng anaerobic bacteria ginawa sa mga branded na tubo na may carbon transport medium:
Buksan ang pakete sa ipinahiwatig na lugar ayon sa diagram;
Alisin ang test tube at buksan ito, itapon ang takip;
Gumamit ng probe para kumuha ng scraping/smear, biopsy sample, o isawsaw ang probe sa isang biological fluid;
Ilagay kaagad ang probe na may biomaterial sa test tube (ang probe handle ay ang takip ng test tube);
Lagyan ng numero ang test tube at ipahiwatig ang numero sa direksyon.
3.4. Mga uri ng biological na materyal para sa pagkuha sa kapaligiran ng transportasyon ng karbon: smears/scrapings, prostate juice, cerebrospinal fluid, synovial fluid, biopsy.
3.5. Imbakan ng biomaterial sa mga tubo na may daluyan ng transportasyon para sa pagtuklas mycoplasmas at ureaplasmas, nonspecific microflora hanggang sa sandali ng transportasyon -
Paghahatid sa Laboratory sa loob ng isang araw.
3.6. Imbakan ng biomaterial sa mga tubo na may daluyan ng transportasyon para sa pagtuklas Trichomonas, gonococci, mga kultura ng anaerobic bacteria hanggang sa sandali ng transportasyon - sa temperatura ng silid.
3.7. Native biomaterial: plema, prostate juice, synovial fluid mula 1 hanggang 10 ml para sa pagtuklas ng hindi tiyak na microflora, mycoplasmas at ureaplasmas ay nakolekta sa isang walang laman na sterile na lalagyan.
Kinakailangang ipaalam sa Laboratory ang araw bago o sa araw ng pagkuha ng biomaterial bago ang 11:00.
Imbakan ng katutubong biomaterial hanggang sa transportasyon - sa kompartimento ng refrigerator (+4ºС - +8ºС).
Paghahatid sa Laboratory sa araw ng koleksyon ng materyal.
3.8. Ihi para sa pagsubok sa antas ng bacteriuria(average na bahagi ng umaga, 10-20 ml) ay kinokolekta sa isang walang laman na sterile na lalagyan na may takip pagkatapos ng masusing toileting ng panlabas na ari.
Kinakailangang ipaalam sa Laboratory ang araw bago o sa araw ng pagkuha ng biomaterial bago ang 11:00.
Imbakan ng biomaterial hanggang sa transportasyon - sa kompartimento ng refrigerator (+4ºС - +8ºС).
Paghahatid sa Laboratory sa araw ng pagkolekta ng biomaterial.
3.9. Dugo para sa sterility.
Ang pinaka-kaalaman ay isang sample ng dugo na kinuha sa panahon ng pagtaas ng temperatura.
Kinokolekta ang dugo sa mga branded na bote na may two-phase transport medium (bote para sa mga matatanda, bote para sa mga bata). Maingat na buksan ang plastic cap ng bote at punasan ang lumalabas na bahagi ng rubber stopper na may 70% na alkohol. Sa ilalim ng sterile na mga kondisyon, kumuha ng dugo mula sa isang ugat na may isang hiringgilya at i-inject ito sa pamamagitan ng isang goma stopper sa bote (4 ml sa isang bote para sa mga matatanda, 2 ml sa isang bote para sa mga bata).
Kinakailangang ipaalam sa Laboratory ang araw bago o sa araw ng pagkuha ng biomaterial bago ang 11:00.
Pag-iimbak ng dugo hanggang sa transportasyon - sa temperatura ng silid.
Paghahatid sa Laboratory sa araw ng pagkolekta ng biomaterial.
3.10. Gatas ng ina upang matukoy ang hindi tiyak na microflora, ito ay kinuha mula sa bawat suso sa isang hiwalay na sterile hermetically sealed cup. Lagyan ng label ang mga tasa: "kaliwang dibdib", "kanang dibdib".
Bago kolektahin ang biomaterial, hugasan ang mga suso ng maligamgam na tubig at sabon, punasan ng malinis na tuwalya, maingat na gamutin ang mga utong at ang lugar ng utong na may cotton swab na binasa ng 70% na solusyon ng ethyl alcohol, at tuyo ng isang sterile na tela (bawat isa. ang glandula ay ginagamot ng isang hiwalay na pamunas). Ang unang 10-15 ml ng ipinahayag na gatas ay hindi ginagamit para sa pagsusuri. Ilabas ang pangalawang bahagi ng gatas mula sa bawat suso sa isang may label na tasa sa halagang ~ 10 ml.
Kinakailangang ipaalam sa Laboratory ang araw bago o sa araw ng pagkuha ng biomaterial bago ang 11:00.
Paghahatid sa Laboratory sa loob ng 2 oras sa araw na kinuha ang materyal.
3.11. Mga feces para sa dysbacteriosis.
Bago kumuha ng sample, ang pag-inom ng alak sa loob ng 3 araw at pag-inom ng antibiotic sa loob ng 2 linggo ay ipinagbabawal. Ang dumi ay dapat makuha nang walang enemas o laxatives. Para sa mga batang may constipation, maaaring gumamit ng isang bar ng sabon para sa isang nakakainis na epekto. Ang mga dumi ay kinokolekta sa isang indibidwal na sisidlan, hugasan mula sa disinfectant. Gamit ang isang sterile na kutsara, kumuha ng 3-5 g ng karaniwang bahagi ng dumi at ilagay ito sa isang sterile na lalagyan.
Kinakailangang ipaalam sa Laboratory ang araw bago o sa araw ng pagkuha ng biomaterial bago ang 11:00.
Imbakan hanggang sa transportasyon - itabi ang lalagyan na may biomaterial na nakabalot sa cotton wool at papel upang mapanatili ang init.
Paghahatid sa Laboratory sa araw ng pagkolekta ng biomaterial.
4. Mga panuntunan para sa pagkuha, pag-iimbak at pagdadala ng biomaterial
para sa mikroskopikong pag-aaral
4.1. Mula sa bawat pasyente - 2 baso(isang baso - ekstrang). Sa bawat baso - 3 puntos: ari ( V), cervical canal ( SA), yuritra ( U). Ilapat ang mga stroke upang ang matte na ibabaw ay nasa kaliwa, sa itaas, at mula dito - mula kaliwa hanggang kanan: v, c, u.
4.2. Ang pagmamarka (Hindi.) sa salamin ay hindi dapat matunaw sa alkohol (maaari kang pumirma sa nagyelo na bahagi ng baso gamit ang isang simpleng lapis). Ang mga pahid ay dapat ayusin sa pamamagitan ng pagpapatuyo ng hangin (30-60 min).
4.3. Ang mga baso ay dapat na may marka, nakatiklop nang magkatabi, nakaimpake sa isang indibidwal na bag na may naaangkop na kasamang inskripsiyon (pasilidad ng pangangalagang pangkalusugan, buong pangalan ng pasyente, numero sa salamin).
4.4. Ang package at nakumpletong referral ay ipinadala sa Laboratory.
5. Mga panuntunan para sa pagkuha, pag-iimbak at pagdadala ng biomaterial
5.1. Para sa 24 na oras bago ang pag-aaral, dapat na iwasan ang douching, intravaginal therapy, at pakikipagtalik. Hindi ka maaaring kumuha ng materyal sa panahon ng regla. Ang pinaka-kaalaman ay ang mga sample na kinuha 14-20 araw pagkatapos ng pagsisimula ng regla.
5.2. Ang materyal ay kinukuha bago ang bimanual na pagsusuri, iba't ibang diagnostic test, at bago kunin ang materyal para sa PCR. Ang materyal ay kinuha nang walang paunang paggamot sa vaginal mucosa.
5.3. Ang isang pag-scrape mula sa vaginal/cervical mucosa ay kinuha gamit ang isang nylon Cervex-Brush, spatula o iba pang instrumento at ikakalat nang pantay-pantay sa ibabaw ng salamin, na nag-iiwan ng isang dulo ng salamin na malinis (para sa pagmamarka). Kinukuha ang isang punto sa bawat baso at nadoble sa isa pang ekstrang baso (kabuuan ng dalawang baso bawat punto). Ang mga pahid ay dapat ayusin sa pamamagitan ng pagpapatuyo ng hangin (30-60 min).
5.4. Ang mga baso ay dapat na may marka (Hindi. at buong pangalan ng pasyente), nakatiklop nang magkatabi, nakaimpake sa isang indibidwal na bag na may naaangkop na kasamang inskripsiyon (pasilidad ng pangangalagang pangkalusugan, buong pangalan ng pasyente, No. sa salamin).
5.5. Ang mga pinatuyong pahid ay maaaring iimbak ng hanggang 6 na araw sa temperatura ng silid.
5.6. Ang pakete at ang nakumpletong direksyon (bawat punto ay may sariling direksyon na nagpapahiwatig ng uri ng biomaterial) ay inilipat sa Laboratory.
Huwag ilagay ang direksyon sa isang bag na may baso, huwag balutin ang mga baso sa direksyon!
Ang pinakamainam na oras para sa pagsusuri ng dugo ay nasa hanay mula 1 hanggang 4 na oras pagkatapos ng koleksyon. Sa hanay mula 5 hanggang 30 minuto, pansamantalang umaangkop ang mga platelet sa anticoagulant at nangyayari ang kanilang pagsasama-sama, na maaaring humantong sa isang maling pagbaba sa mga ito sa dugo sample.
Hindi ipinapayong suriin ang dugo pagkalipas ng 8 oras pagkatapos ng koleksyon, dahil Ang ilang mga katangian ng cell ay nagbabago: ang dami ng mga leukocytes ay bumababa, ang dami ng mga pulang selula ng dugo ay tumataas, na sa huli ay humahantong sa mga maling resulta ng pagsukat at hindi tamang interpretasyon ng mga resulta. Tanging ang konsentrasyon ng hemoglobin at bilang ng platelet ay nananatiling matatag sa loob ng 24 na oras ng pag-iimbak ng dugo.
Ang dugo ay hindi dapat magyelo. Ang mga capillary na dugo na may K 2 EDTA ay dapat na nakaimbak sa temperatura ng silid at nasuri sa loob ng 4 na oras pagkatapos ng koleksyon.
Kung kinakailangan ang isang naantalang pagsusuri (transportasyon sa malalayong distansya, teknikal na malfunction ng device, atbp.), ang mga sample ng dugo ay iniimbak sa refrigerator (4 o - 8 o C) at sinusuri sa loob ng 24 na oras. Gayunpaman, dapat itong isaalang-alang na nangyayari ang pamamaga ng cell at mga pagbabago sa mga parameter na nauugnay sa kanilang dami. Sa halos malusog na mga tao, ang mga pagbabagong ito ay hindi kritikal at hindi nakakaapekto sa dami ng mga parameter, ngunit sa pagkakaroon ng mga pathological cell, ang huli ay maaaring magbago o kahit na masira sa loob ng ilang oras mula sa sandaling ang dugo ay kinuha.
Kaagad bago ang pagsubok, ang dugo ay dapat na lubusan na ihalo sa loob ng ilang minuto upang palabnawin ang anticoagulant at pantay na ipamahagi ang mga nabuong elemento sa plasma. Ang pangmatagalang patuloy na paghahalo ng mga sample hanggang sa masuri ang mga ito ay hindi inirerekomenda dahil sa posibleng pinsala at pagkabulok ng mga pathological cell.
Ang pagsusuri ng dugo sa isang awtomatikong analyzer ay isinasagawa sa temperatura ng silid. Ang dugo na nakaimbak sa refrigerator ay dapat munang magpainit sa temperatura ng silid, dahil sa mababang temperatura ang lagkit ng dugo ay tumataas at ang mga nabuong elemento ay may posibilidad na magkadikit, na humahantong sa kapansanan sa paghahalo at hindi kumpletong lysis. Ang pagsusuri sa malamig na dugo ay maaaring magdulot ng "mga signal ng alarma" dahil sa compression ng leukocyte histogram.
Kapag nagsasagawa ng mga pag-aaral ng hematological sa isang malaking distansya mula sa lugar ng koleksyon ng dugo, ang mga problema na nauugnay sa hindi kanais-nais na mga kondisyon ng transportasyon ay hindi maaaring hindi lumitaw. Ang epekto ng mekanikal na mga kadahilanan (pag-alog, panginginig ng boses, pagpapakilos, atbp.), mga kondisyon ng temperatura, ang posibilidad ng spillage at kontaminasyon ng mga sample ay maaaring makaapekto sa kalidad ng mga pagsusuri. Upang maalis ang mga kadahilanang ito, kapag nagdadala ng mga tubo ng dugo, inirerekumenda na gumamit ng hermetically sealed plastic tubes at mga espesyal na insulated transport container. Sa panahon ng transportasyon, hindi pinahihintulutan ang pakikipag-ugnayan sa sample (na may katutubong materyal) at ang referral form, alinsunod sa mga panuntunan sa kaligtasan ng biyolohikal.
^ 4.3. Pagtanggap at pagpaparehistro ng biological na materyal
Ang mga tubo na may mga venous blood sample ay inihahatid sa laboratoryo sa araw ng koleksyon sa mga rack sa mga espesyal na bag para sa paghahatid ng biological na materyal, kung saan ang mga tubo ay dapat na nasa isang patayong posisyon, at kapag dinala sa isang malayong distansya - sa mga espesyal na lalagyan.
Ang empleyado ng laboratoryo na tumatanggap ng materyal ay dapat suriin:
Katumpakan ng pagpaparehistro ng referral: ang referral form ay nagpapahiwatig ng data ng paksa (apelyido, unang pangalan at patronymic, edad, medikal na kasaysayan o outpatient card no., departamento, diagnosis, therapy na ginawa);
Pag-label ng mga tubo na may mga sample ng dugo (dapat silang markahan ng isang code o apelyido ng pasyente, kapareho ng code at apelyido sa form para sa pagpapadala ng materyal para sa pananaliksik). Dapat irehistro ng katulong sa laboratoryo ang naihatid na materyal at tandaan ang bilang ng mga tubo.
^ 4.4 Pagkalkula ng cellular na komposisyon ng dugo sa isang hematology analyzer
Ang pagkalkula ng cellular na komposisyon ng dugo sa isang hematology analyzer ay dapat isagawa sa mahigpit na alinsunod sa mga tagubilin para sa aparato.
Kapag nagtatrabaho sa isang hematology analyzer dapat mong:
Gumamit ng dugo na nagpapatatag sa K-2 EDTA sa inirerekomendang proporsyon para sa isang partikular na asin at mga disposable tubes para sa hematological na pag-aaral (simple o vacuum);
Bago ang pagsusuri, maingat ngunit lubusan na paghaluin ang test tube na may dugo (inirerekumenda para sa layuning ito na gumamit ng isang aparato para sa paghahalo ng mga sample ng dugo - isang rotomix);
Gumamit ng mga reagents na nakarehistro alinsunod sa itinatag na pamamaraan; kapag binabago ang mga reagents sa mga produkto mula sa ibang tagagawa, dapat mong suriin at itatag ang pagkakalibrate ng aparato;
Simulan ang aparato, obserbahan ang lahat ng mga yugto ng paghuhugas, pagkamit ng zero (background) na mga halaga ng mga tagapagpahiwatig sa lahat ng mga channel;
Bigyang-pansin ang mga mensahe ng device tungkol sa mga posibleng sistematikong error: tandaan na ang pagtaas ng MSHC sa itaas ng mga normal na halaga ay kadalasang resulta ng error sa pagsukat;
Kung may nakitang error, siguraduhing alisin ang dahilan at huwag gumana sa isang may sira na device;
Magsagawa ng mga pamamaraan ng pagkontrol sa kalidad ayon sa naaangkop na programa. na may pagtatasa ng resulta na nakuha;
Magtrabaho nang makahulugan, paghahambing ng mga resulta na nakuha sa mga klinikal na katangian ng mga sample ng pasyente;
Pagkatapos makumpleto ang mga sukat, lubusan na banlawan ang analyzer;
Kapag itinigil ang aparato sa mahabang panahon, siguraduhing isagawa ang lahat ng mga pamamaraan sa pangangalaga (kung maaari, kasama ng isang service engineer);
Kung may mga problemang teknikal, dapat kang humingi ng tulong sa isang service engineer mula sa isang kumpanya na may lisensya para sa teknikal na pagpapanatili; Huwag ipagkatiwala ang trabaho sa mga hindi sanay na tauhan.
Kapag nagsimulang magtrabaho sa isang hematology analyzer, dapat mong isaalang-alang ang mga limitasyon ng linearity ng pagsukat ng nasuri na mga parameter. Ang pagsusuri sa mga sample na may nasuri na mga halaga ng parameter na lumalampas sa limitasyon ng linearity ng pagsukat ay maaaring humantong sa mga maling resulta. Sa karamihan ng mga kaso, kapag sinusuri ang mga sample na may hypercytoses, ang analyzer ay nagpapakita ng icon na "D" (dilute) sa halip na ang halaga ng sinusukat na parameter, na nagpapahiwatig ng pangangailangan na palabnawin ang sample at ulitin ang pagsukat. Dapat isagawa ang mga dilution hanggang sa makuha ang magkatulad na huling resulta sa dalawang pinakamalapit na dilution.
^ HALIMBAWA ─ Ang pagsusuri ng isang sample mula sa isang pasyenteng may hyperleukocytosis sa tatlong magkakaibang hematological analyzer ay ipinakita sa talahanayan.
Talahanayan 3
¦Ang mga resulta ng pagbibilang ng halaga para sa hyperleukocytosis, na isinagawa sa tatlong magkakaibang hematological analyzer
| ^ Mga pagsusuri sa hematology | Sample na antas ng pagbabanto | Kabuuang halaga |
|||
| ^ Buong dugo | 1:1 | 1:3 | 1:4 | WBC |
|
| 1 | D | 274,5 | 274,5 | 143,1 | 715,5 |
| 2 | 322,6 | 253,2 | 177,7 | 141,8 | 709,0 |
| 3 | D | D | 168,3 | 139,1 | 695,5 |
Ipinapakita ng talahanayan na kapag pinag-aaralan ang buong dugo, isang analyzer (ika-2) lamang ang nagbigay ng digital na halaga para sa bilang ng mga leukocytes, ang iba pang dalawa ay nagpapahiwatig ng pangangailangan na palabnawin ang sample. Ang kasunod na sunud-sunod na pagsukat ng sample sa tatlong dilution ay naging posible upang makamit ang magkatulad na huling resulta sa lahat ng instrumento lamang sa mga dilution na 1:3 at 1:4. Kaya, ang huling bilang ng leukocyte ay 700.0 - 710.0 x 10 9 / l, na higit sa 2 beses na mas mataas kaysa sa paunang halaga na nakuha sa buong dugo sa 2nd analyzer at 1.5 - na may 1:1 dilution sa 1st at 2nd analyzer .
^ Pag-calibrate ng hematology analyzers
Na nakakamit ang pagkakapantay-pantay ng sistematikong bahagi ng error sa zero (zero offset) o nagpapatunay na ang offset ay katumbas ng zero na isinasaalang-alang ang error sa pagkakalibrate. Ang pagkakalibrate ng mga hematology analyzer ay maaaring isagawa sa dalawang pangunahing paraan:
Para sa buong dugo;
Batay sa mga na-stabilize na sample ng dugo na may mga sertipikadong halaga.
^ 5.1 Pag-calibrate gamit ang buong dugo
Ang buong pagkakalibrate ng dugo ay maaaring isagawa sa pamamagitan ng paghahambing sa isang reference analyzer, na ang pagkakalibrate ay napatunayan at maaaring kunin bilang sanggunian.
Para sa pagkakalibrate sa pamamagitan ng paghahambing sa isang reference analyzer, 20 pasyenteng venous blood sample na random na pinili mula sa pang-araw-araw na programa ng pananaliksik ng isang laboratoryo na may isang reference analyzer ang ginagamit. Dapat kolektahin ang dugo sa mga vacuum tube na may anticoagulant K 2 EDTA. Pagkatapos ng pagsusuri sa isang reference analyzer, ang mga tubo ng dugo ay inihahatid sa laboratoryo para sa pagsusuri sa isang naka-calibrate na aparato. Ang oras sa pagitan ng mga sukat sa reference at naka-calibrate na analyzer ay hindi dapat lumampas sa 4 na oras. Ang pagsusuri ng mga sample ng pagkakalibrate sa instrumentong na-calibrate ay dapat gawin sa parehong paraan tulad ng pagsusuri ng mga sample ng pasyente. Ang mga resulta na nakuha ay ipinasok sa isang talahanayan sa form na ibinigay sa Appendix 1. Ang mga resultang ito ay ginagamit upang matukoy ang kaukulang mga salik ng pagkakalibrate, na ayon sa bilang ay katumbas ng mga slope coefficient ng mga linya ng pagkakalibrate na dumadaan sa pinagmulan ng mga coordinate sa graph.
Ang mga salik ng pagkakalibrate ay kinakalkula sa isang computer gamit ang EXCEL program, na bahagi ng Microsoft OFFICE package ng anumang bersyon. Upang kalkulahin ang mga kadahilanan ng pagkakalibrate sa programang ito, ang isang scatter diagram ay itinayo, kung saan ang mga sinusukat na halaga ay naka-plot sa kahabaan ng X axis, ang mga halaga ng sanggunian ay naka-plot kasama ang Y axis, at isang linya ng regression ay itinakda sa pamamagitan ng pinagmulan ng mga coordinate. Ang programa ay gumuhit ng linya ng pagkakalibrate at tinutukoy ang slope nito, na siyang nais na kadahilanan ng pagkakalibrate. Kung may nakitang mga gross error - ang mga puntos ay makabuluhang inalis mula sa linya ng pagkakalibrate sa graph, dapat silang alisin sa pagkalkula (binura ang buong linya sa talahanayan ng EXCEL). Ang resultang calibration factor ay ipinasok sa talahanayan sa Appendix 1 at ginagamit upang manu-manong ayusin ang pagkakalibrate ng device alinsunod sa mga tagubilin sa pagpapatakbo nito.
^ Pag-calibrate gamit ang mga na-stabilize na sample ng dugo na may mga sertipikadong halaga
Hangga't maaari, ang mga calibrator na partikular na idinisenyo ng tagagawa upang i-calibrate ang isang partikular na uri ng analyzer ay dapat gamitin. Ang mga error sa set point sa modernong hematology calibrators ay karaniwang pare-pareho sa mga medikal na pangangailangan. Gayunpaman, ang mga naturang calibrator ay hindi magagamit para sa lahat ng uri ng mga analyzer. Bilang karagdagan, dahil sa limitadong buhay ng istante (karaniwang hindi hihigit sa 45 araw), hindi laging posible na makakuha ng mga sample na hindi nag-expire.
Ang mga materyales sa kontrol ay hindi inilaan ng tagagawa para sa mga layunin ng pagkakalibrate: ang mga pagpapaubaya para sa mga halaga ay mas malawak, at ang mga pamamaraan ng sertipikasyon at kontrol sa produksyon ay hindi kasing higpit ng para sa mga calibrator. Kapag nag-calibrate, ang mga control material ay magagamit lamang bilang isang mapagkukunan ng impormasyon tungkol sa metrological na katangian ng device.
Dapat, gayunpaman, tandaan na kapag gumagamit ng parehong mga control na materyales at mga calibrator para sa mga layunin ng pagkakalibrate, ang mga tampok ng paghahanda ng sample at pagpapatakbo ng mga analyzer ay may malaking epekto sa mga bahagi ng sistematikong error. Ang mga nakakaimpluwensyang salik na ito ay hindi maaaring isaalang-alang kapag nag-calibrate sa mga komersyal na materyales. Bilang isang resulta, sa lahat ng mga kaso, ang pag-calibrate na ginawa ay dapat na ma-verify sa pamamagitan ng pagsusuri sa mga istatistika ng mga resulta na nakuha sa mga sample ng pasyente (mga indeks ng erythrocyte, mga normal na hanay).
5.2.1 Ang dalas ng pagkakalibrate ng mga hematology analyzer
Ang mga kinakailangan para sa dalas ng pagkakalibrate ay karaniwang nakapaloob sa mga tagubilin sa pagpapatakbo ng analyzer. Karaniwan, ang pagkakalibrate ay kinakailangan pagkatapos ng pagkumpuni o kapag ang makabuluhang drift ay nakita sa panloob na mga pamamaraan ng kontrol sa kalidad ng laboratoryo.
5.2.2 Pamamaraan sa pagkakalibrate
Ang pamamaraan ng pagkakalibrate ay isinasagawa alinsunod sa mga tagubilin sa pagpapatakbo para sa analyzer.
5.2.3 Pagsubaybay sa resulta ng pagkakalibrate
Ang kontrol na ito ay binubuo ng pagsusuri sa sample ng pagkakalibrate kaagad pagkatapos ng pagkakalibrate. Ang nakumpletong pagkakalibrate ay tinatanggap kung ang mga resulta ng pagsusuri ay tumutugma sa mga halaga ng pagkakalibrate, na isinasaalang-alang ang analytical variation ng analyzer.
5.2.4 Pag-verify ng pagkakalibrate gamit ang mga indeks ng pulang selula ng dugo
Ang pamamaraang ito ng pagsuri at pagpino sa pagkakalibrate ay sinasamantala ang katotohanan na ang mga average na halaga ng mga indeks ng pulang selula ng dugo - MCHC, MCH at MCV sa mga pasyente ay may maliit na pagkakaiba-iba at samakatuwid ay maaaring epektibong magamit para sa kontrol ng pagkakalibrate at karagdagang kontrol sa kalidad. Ang inirerekomendang bilang ng mga sample para sa pag-average ay 20. Maaaring gamitin ang anumang sample ng pasyente upang matukoy ang mean MCHC, habang ang mga pasyenteng may anemia ay dapat na hindi kasama upang matukoy ang mean na MCHC at MCV.
Maraming mga modernong hematology analyzer ang may built-in na mga programa para sa pagkalkula ng mga kasalukuyang average, na lubos na nagpapadali sa pagproseso ng data.
Ang mga target na halaga ng mga indeks ng erythrocyte kapag na-average ang higit sa 20 mga sample ng mga pasyente na may edad na 18 hanggang 60 taon, anuman ang kasarian, ay ipinapakita sa Talahanayan 4.
Talahanayan 4
Mga target na halaga ng mga indeks ng erythrocyte
Kung ang mga average na halaga na nakuha ay nasa labas ng control tolerance, nangangahulugan ito na ang MCV o Hgb o RBC calibration ay kailangang isaayos.
Kapag tinutukoy ang mga dahilan para sa hindi kasiya-siyang pagkakalibrate ng mga parameter ng pulang selula ng dugo kapag gumagamit ng mga komersyal na pagkakalibrate/kontrol na materyales, ang sumusunod na pagtatasa ng pagiging maaasahan ng mga sertipikadong halaga ng mga materyales ay dapat isaalang-alang:
Ang pinakatumpak at time-stable na parameter ay ang konsentrasyon ng mga pulang selula ng dugo;
Ang isang stable na parameter ay Hgb, ngunit maaaring depende ito sa mga reagents na ginamit (halimbawa, cyanogen o cyanogen-free);
Ang pinaka-hindi matatag na parameter ay MCV. Ang halaga ng MCV ay may posibilidad na magbago sa buong buhay ng istante ng materyal sa isang medyo malawak na hanay ng mga halaga. Kapag pinipino ang pagkakalibrate ng MCV, ang data na nakuha mula sa pagsusuri ng mga average na indeks ng pulang selula ng dugo ay nangunguna sa mga sertipikadong halaga sa mga na-stabilize na sample ng dugo.
Sa pag-aakalang tama ang pagkakalibrate ng RBC, ipinapakita ng Talahanayan 5 ang mga posibleng dahilan para ang mga average na halaga ng index ay bumaba sa labas ng control tolerance.
Talahanayan 5
Mga dahilan para sa paglampas sa mga average na halaga ng mga indeks ng erythrocyte
| Mga indeks ng erythrocytic | Average na halaga ng index | Average na halaga ng index | Average na halaga ng index | Average na halaga ng index |
| MCHC | Sa ibaba ng hangganan | Sa itaas ng hangganan | Sa itaas ng hangganan | Sa ibaba ng hangganan |
| MCH | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya | Sa itaas ng hangganan | Sa ibaba ng hangganan |
| MCV | Sa itaas ng hangganan | Sa ibaba ng hangganan | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya |
| Dahilan | Masyadong mataas ang MCV | Ibinaba ang MCV | Masyadong mataas ang Hgb | Mababa ang Hgb |