Department of Clinical Laboratory Diagnostics na may mga kursong FPK at PK
Listahan ng mga seksyon sa discipline clinical laboratory diagnostics para sa paghahanda para sa pagsasagawa ng mga pagsusulit sa silid-aralan sa panahon ng winter laboratory examination session ng mga mag-aaral ng 6th year correspondence.
1. Organisasyong istraktura ng clinical diagnostic laboratory.
2. Pangkalahatang mga klinikal na pagsusuri sa laboratoryo.
3. Mga pagsusuri sa laboratoryo ng hematological.
4. Mga pamamaraan sa laboratoryo para sa pagtatasa ng hemostasis.
5. Mga pagsusuri sa laboratoryo ng biochemical.
6. Kontrol sa kalidad ng mga pagsubok sa laboratoryo.
Isang listahan ng mga checklist sa discipline clinical laboratory diagnostics para sa paghahanda para sa pagsasagawa ng mga pagsusulit sa silid-aralan sa panahon ng winter laboratory examination session ng 6th year correspondence students.
Ang istrukturang organisasyon ng isang klinikal na diagnostic na laboratoryo.
Mga dokumento sa regulasyon at mga order ng Ministry of Health ng Republika ng Belarus na kinokontrol ang gawain ng clinical diagnostic laboratory.
Kagamitan para sa clinical diagnostic laboratory.
Pangunahing kagamitan sa pagsukat at analytical ng clinical diagnostic laboratory.
Mga pangunahing pag-iingat sa kaligtasan at mga regulasyon sa kalusugan kapag nagtatrabaho sa isang klinikal na diagnostic na laboratoryo.
Mga panuntunan para sa koleksyon, paghahatid, pagtanggap, pagpaparehistro at pagpaparehistro ng biological na materyal.
Pangkalahatang mga klinikal na pagsubok sa laboratoryo.
Paghahanda sa pasyente para sa pag-aaral, pagkolekta, pag-iimbak at pagproseso ng materyal para sa pangkalahatang pagsusuri ng ihi.
Mga pisikal na katangian ng ihi: kulay, transparency, amoy, pH, relatibong density ng ihi.
Mga kemikal na katangian ng ihi, mga pamamaraan para sa pagtukoy ng kabuuang protina (mga pamamaraan ng husay at dami, mga pamamaraan ng "dry chemistry").
Pagpapasiya ng glucose sa ihi gamit ang indicator paper at ang glucose oxidase method.
Mga panuntunan para sa paghahanda ng katutubong paghahanda ng sediment sa ihi.
Dami ng pagpapasiya ng mga elemento ng organisadong sediment ng ihi.
Pagpapasiya ng mga elemento ng hindi organisadong sediment.
Mga uri ng hindi organisadong pag-ulan.
Pangkalahatang klinikal na pagsusuri sa dugo.
Mga katangian ng mga pamamaraan para sa pagtukoy ng ESR, konsentrasyon ng hemoglobin, pagbibilang ng bilang ng mga pulang selula ng dugo, index ng kulay, leukocytes at leukocyte formula.
Mga panuntunan para sa paghahanda ng pasyente, pagkolekta, pag-iimbak at pagproseso ng materyal para sa isang pangkalahatang klinikal na pagsusuri sa dugo.
Mga normal na halaga at limitasyon ng physiological fluctuations sa antas ng erythrocytes at leukocytes sa peripheral blood.
Mga panuntunan para sa paghahanda ng gamot at pagbibilang sa silid ni Goryaev.
Paraan para sa pagtukoy ng hemoglobin ng dugo gamit ang paraan ng hemoglobin cyanide.
Modernong ideya ng bone marrow hematopoiesis.
Porsiyento ng mga leukocytes sa peripheral blood. Diagnostic na halaga ng leukocyte formula.
Mga pag-aaral sa laboratoryo na nagpapakilala sa sistema ng coagulation ng dugo.
Ang konsepto ng sistema ng coagulation ng dugo.
Pangunahing hemostasis. Mga pamamaraan sa laboratoryo para sa pag-aaral ng pangunahing hemostasis.
Mga yugto ng coagulation hemostasis.
Fibrinolysis.
Sistema ng anticoagulant.
Mga pamamaraan ng laboratoryo para sa pagtatasa ng pangalawang hemostasis.
Mga pag-aaral sa laboratoryo na nagpapakilala sa mga parameter ng biochemical ng dugo.
Mga tagapagpahiwatig ng laboratoryo na nagpapakilala sa metabolismo ng protina. Pagpapasiya ng kabuuang protina sa serum ng dugo gamit ang paraan ng biuret.
Ang natitirang nitrogen at mga bahagi nito. Mga pamamaraan para sa pagtukoy ng urea, creatinine, uric acid.
Mga pamamaraan para sa pag-aaral ng mga enzyme. Klinikal at diagnostic na halaga ng pagtukoy ng aktibidad ng enzyme.
Biological na papel ng carbohydrates. Pagpapasiya ng nilalaman ng glucose sa pamamagitan ng enzymatic na pamamaraan.
Mga lipoprotein ng plasma ng dugo. Mga tagapagpahiwatig ng laboratoryo ng metabolismo ng lipid.
Ang pagbuo at metabolismo ng mga pigment ng apdo. Klinikal at diagnostic na kahalagahan ng pag-aaral ng mga tagapagpahiwatig ng metabolismo ng pigment.
Analytical na pagiging maaasahan at kontrol sa kalidad ng mga klinikal na pagsubok sa laboratoryo.
Analytical na pagsusuri ng mga resulta ng laboratoryo. Mga uri ng mga pagkakamali, ang kanilang mga katangian.
Kontrol sa kalidad sa laboratoryo. Mga pamamaraan para sa pagsubaybay sa reproducibility ng mga resulta ng pananaliksik. Pagsubaybay sa kawastuhan ng mga resulta ng pananaliksik.
Cnag-iiwan ng analytical laboratory report.
Ang isang analytical na ulat sa laboratoryo ay iginuhit ayon sa mga kondisyon ng sitwasyong gawain.
Batay sa kanilang pagsusuri sa iminungkahing data ng laboratoryo, ang mga sumusunod na katanungan ay dapat masagot:
Ang prinsipyong pinagbabatayan ng nasuri na pamamaraan;
Mga kinakailangang kagamitan;
Mga panuntunan para sa paghahanda ng materyal na pinag-aaralan at ang mga pangunahing mapagkukunan ng mga pagkakamali na posible kapag isinasagawa ang pamamaraang ito;
Mga Yunit;
Ang konsepto ng mga halaga ng sanggunian. Klinikal at diagnostic na kahalagahan ng nasuri na pamamaraan.
Mga praktikal na kasanayan:
Organisasyon ng isang lugar ng trabaho para sa pananaliksik sa laboratoryo;
Paghahanda ng mga reagents sa kinakailangang konsentrasyon;
Pagtanggap, pag-label at pag-iimbak ng biological na materyal;
Pagsasagawa ng pangkalahatang pagsusuri sa dugo;
Pagsasagawa ng pangkalahatang pagsusuri sa ihi;
Pagsasagawa ng isang pag-aaral ng hemostasiological;
Pagsasagawa ng biochemical studies;
Pagpaparehistro ng mga resulta ng pagsubok sa laboratoryo;
Ang pinakamainam na oras para sa pagsusuri ng dugo ay nasa hanay mula 1 hanggang 4 na oras pagkatapos ng koleksyon. Sa hanay mula 5 hanggang 30 minuto, pansamantalang umaangkop ang mga platelet sa anticoagulant at nangyayari ang kanilang pagsasama-sama, na maaaring humantong sa isang maling pagbaba sa mga ito sa dugo sample.
Hindi ipinapayong suriin ang dugo pagkalipas ng 8 oras pagkatapos ng koleksyon, dahil Ang ilang mga katangian ng cell ay nagbabago: ang dami ng mga leukocytes ay bumababa, ang dami ng mga pulang selula ng dugo ay tumataas, na sa huli ay humahantong sa mga maling resulta ng pagsukat at hindi tamang interpretasyon ng mga resulta. Tanging ang konsentrasyon ng hemoglobin at bilang ng platelet ay nananatiling matatag sa loob ng 24 na oras ng pag-iimbak ng dugo.
Ang dugo ay hindi dapat magyelo. Ang mga capillary na dugo na may K 2 EDTA ay dapat na nakaimbak sa temperatura ng silid at nasuri sa loob ng 4 na oras pagkatapos ng koleksyon.
Kung kinakailangan ang isang naantalang pagsusuri (transportasyon sa malalayong distansya, teknikal na malfunction ng device, atbp.), ang mga sample ng dugo ay iniimbak sa refrigerator (4 o - 8 o C) at sinusuri sa loob ng 24 na oras. Gayunpaman, dapat itong isaalang-alang na nangyayari ang pamamaga ng cell at mga pagbabago sa mga parameter na nauugnay sa kanilang dami. Sa halos malusog na mga tao, ang mga pagbabagong ito ay hindi kritikal at hindi nakakaapekto sa dami ng mga parameter, ngunit sa pagkakaroon ng mga pathological cell, ang huli ay maaaring magbago o kahit na masira sa loob ng ilang oras mula sa sandaling ang dugo ay kinuha.
Kaagad bago ang pagsubok, ang dugo ay dapat na lubusan na ihalo sa loob ng ilang minuto upang palabnawin ang anticoagulant at pantay na ipamahagi ang mga nabuong elemento sa plasma. Ang pangmatagalang patuloy na paghahalo ng mga sample hanggang sa masuri ang mga ito ay hindi inirerekomenda dahil sa posibleng pinsala at pagkabulok ng mga pathological cell.
Ang pagsusuri ng dugo sa isang awtomatikong analyzer ay isinasagawa sa temperatura ng silid. Ang dugo na nakaimbak sa refrigerator ay dapat munang magpainit sa temperatura ng silid, dahil sa mababang temperatura ang lagkit ng dugo ay tumataas at ang mga nabuong elemento ay may posibilidad na magkadikit, na humahantong sa kapansanan sa paghahalo at hindi kumpletong lysis. Ang pagsusuri sa malamig na dugo ay maaaring magdulot ng "mga signal ng alarma" dahil sa compression ng leukocyte histogram.
Kapag nagsasagawa ng mga pag-aaral ng hematological sa isang malaking distansya mula sa lugar ng koleksyon ng dugo, ang mga problema na nauugnay sa hindi kanais-nais na mga kondisyon ng transportasyon ay hindi maaaring hindi lumitaw. Ang epekto ng mekanikal na mga kadahilanan (pag-alog, panginginig ng boses, pagpapakilos, atbp.), mga kondisyon ng temperatura, ang posibilidad ng spillage at kontaminasyon ng mga sample ay maaaring makaapekto sa kalidad ng mga pagsusuri. Upang maalis ang mga kadahilanang ito, kapag nagdadala ng mga tubo ng dugo, inirerekumenda na gumamit ng hermetically sealed plastic tubes at mga espesyal na insulated transport container. Sa panahon ng transportasyon, hindi pinahihintulutan ang pakikipag-ugnayan sa sample (na may katutubong materyal) at ang referral form, alinsunod sa mga panuntunan sa kaligtasan ng biyolohikal.
^ 4.3. Pagtanggap at pagpaparehistro ng biological na materyal
Ang mga tubo na may mga venous blood sample ay inihahatid sa laboratoryo sa araw ng koleksyon sa mga rack sa mga espesyal na bag para sa paghahatid ng biological na materyal, kung saan ang mga tubo ay dapat na nasa isang patayong posisyon, at kapag dinala sa isang malayong distansya - sa mga espesyal na lalagyan.
Ang empleyado ng laboratoryo na tumatanggap ng materyal ay dapat suriin:
Katumpakan ng pagpaparehistro ng referral: ang referral form ay nagpapahiwatig ng data ng paksa (apelyido, unang pangalan at patronymic, edad, medikal na kasaysayan o outpatient card no., departamento, diagnosis, therapy na ginawa);
Pag-label ng mga tubo na may mga sample ng dugo (dapat silang markahan ng isang code o apelyido ng pasyente, kapareho ng code at apelyido sa form para sa pagpapadala ng materyal para sa pananaliksik). Dapat irehistro ng katulong sa laboratoryo ang naihatid na materyal at tandaan ang bilang ng mga tubo.
^ 4.4 Pagkalkula ng cellular na komposisyon ng dugo sa isang hematology analyzer
Ang pagkalkula ng cellular na komposisyon ng dugo sa isang hematology analyzer ay dapat isagawa sa mahigpit na alinsunod sa mga tagubilin para sa aparato.
Kapag nagtatrabaho sa isang hematology analyzer dapat mong:
Gumamit ng dugo na nagpapatatag sa K-2 EDTA sa inirerekomendang proporsyon para sa isang partikular na asin at mga disposable tubes para sa hematological na pag-aaral (simple o vacuum);
Bago ang pagsusuri, maingat ngunit lubusan na paghaluin ang test tube na may dugo (inirerekumenda para sa layuning ito na gumamit ng isang aparato para sa paghahalo ng mga sample ng dugo - isang rotomix);
Gumamit ng mga reagents na nakarehistro alinsunod sa itinatag na pamamaraan; kapag binabago ang mga reagents sa mga produkto mula sa ibang tagagawa, dapat mong suriin at itatag ang pagkakalibrate ng aparato;
Simulan ang aparato, obserbahan ang lahat ng mga yugto ng paghuhugas, pagkamit ng zero (background) na mga halaga ng mga tagapagpahiwatig sa lahat ng mga channel;
Bigyang-pansin ang mga mensahe ng device tungkol sa mga posibleng sistematikong error: tandaan na ang pagtaas ng MSHC sa itaas ng mga normal na halaga ay kadalasang resulta ng error sa pagsukat;
Kung may nakitang error, siguraduhing alisin ang dahilan at huwag gumana sa isang may sira na device;
Magsagawa ng mga pamamaraan ng pagkontrol sa kalidad ayon sa naaangkop na programa. na may pagtatasa ng resulta na nakuha;
Magtrabaho nang makahulugan, paghahambing ng mga resulta na nakuha sa mga klinikal na katangian ng mga sample ng pasyente;
Pagkatapos makumpleto ang mga sukat, lubusan na banlawan ang analyzer;
Kapag itinigil ang aparato sa mahabang panahon, siguraduhing isagawa ang lahat ng mga pamamaraan sa pangangalaga (kung maaari, kasama ng isang service engineer);
Kung may mga problemang teknikal, dapat kang humingi ng tulong sa isang service engineer mula sa isang kumpanya na may lisensya para sa teknikal na pagpapanatili; Huwag ipagkatiwala ang trabaho sa mga hindi sanay na tauhan.
Kapag nagsimulang magtrabaho sa isang hematology analyzer, dapat mong isaalang-alang ang mga limitasyon ng linearity ng pagsukat ng nasuri na mga parameter. Ang pagsusuri sa mga sample na may nasuri na mga halaga ng parameter na lumalampas sa limitasyon ng linearity ng pagsukat ay maaaring humantong sa mga maling resulta. Sa karamihan ng mga kaso, kapag sinusuri ang mga sample na may hypercytoses, ang analyzer ay nagpapakita ng icon na "D" (dilute) sa halip na ang halaga ng sinusukat na parameter, na nagpapahiwatig ng pangangailangan na palabnawin ang sample at ulitin ang pagsukat. Dapat isagawa ang mga dilution hanggang sa makuha ang magkatulad na huling resulta sa dalawang pinakamalapit na dilution.
^ HALIMBAWA ─ Ang pagsusuri ng isang sample mula sa isang pasyenteng may hyperleukocytosis sa tatlong magkakaibang hematological analyzer ay ipinakita sa talahanayan.
Talahanayan 3
¦Ang mga resulta ng pagbibilang ng halaga para sa hyperleukocytosis, na isinagawa sa tatlong magkakaibang hematological analyzer
| ^ Mga pagsusuri sa hematology | Sample na antas ng pagbabanto | Kabuuang halaga |
|||
| ^ Buong dugo | 1:1 | 1:3 | 1:4 | WBC |
|
| 1 | D | 274,5 | 274,5 | 143,1 | 715,5 |
| 2 | 322,6 | 253,2 | 177,7 | 141,8 | 709,0 |
| 3 | D | D | 168,3 | 139,1 | 695,5 |
Ipinapakita ng talahanayan na kapag pinag-aaralan ang buong dugo, isang analyzer (ika-2) lamang ang nagbigay ng digital na halaga para sa bilang ng mga leukocytes, ang iba pang dalawa ay nagpapahiwatig ng pangangailangan na palabnawin ang sample. Ang kasunod na sunud-sunod na pagsukat ng sample sa tatlong dilution ay naging posible upang makamit ang magkatulad na mga huling resulta sa lahat ng mga instrumento lamang sa mga dilution na 1:3 at 1:4. Kaya, ang huling bilang ng leukocyte ay 700.0 - 710.0 x 10 9 / l, na higit sa 2 beses na mas mataas kaysa sa paunang halaga na nakuha sa buong dugo sa 2nd analyzer at 1.5 - na may 1:1 dilution sa 1st at 2nd analyzer .
^ Pag-calibrate ng mga hematology analyzer
Na nakakamit ang pagkakapantay-pantay ng sistematikong bahagi ng error sa zero (zero offset) o nagpapatunay na ang offset ay katumbas ng zero na isinasaalang-alang ang error sa pagkakalibrate. Ang pagkakalibrate ng mga hematology analyzer ay maaaring isagawa sa dalawang pangunahing paraan:
Para sa buong dugo;
Batay sa mga na-stabilize na sample ng dugo na may mga sertipikadong halaga.
^ 5.1 Pag-calibrate gamit ang buong dugo
Ang buong pag-calibrate ng dugo ay maaaring isagawa sa pamamagitan ng paghahambing sa isang reference analyzer, na ang pagkakalibrate ay napatunayan at maaaring kunin bilang reference.
Para sa pagkakalibrate sa pamamagitan ng paghahambing sa isang reference analyzer, 20 pasyenteng venous blood sample na random na pinili mula sa pang-araw-araw na programa ng pananaliksik ng isang laboratoryo na may isang reference analyzer ang ginagamit. Dapat kolektahin ang dugo sa mga vacuum tube na may anticoagulant K 2 EDTA. Pagkatapos ng pagsusuri sa isang reference analyzer, ang mga tubo ng dugo ay inihahatid sa laboratoryo para sa pagsusuri sa isang naka-calibrate na aparato. Ang oras sa pagitan ng mga sukat sa reference at naka-calibrate na analyzer ay hindi dapat lumampas sa 4 na oras. Ang pagsusuri ng mga sample ng pagkakalibrate sa instrumentong na-calibrate ay dapat gawin sa parehong paraan tulad ng pagsusuri ng mga sample ng pasyente. Ang mga resultang nakuha ay ipinasok sa isang talahanayan sa form na ibinigay sa Appendix 1. Ang mga resultang ito ay ginagamit upang matukoy ang kaukulang mga salik ng pagkakalibrate, na ayon sa bilang ay katumbas ng mga slope coefficient ng mga linya ng pagkakalibrate na dumadaan sa pinagmulan ng mga coordinate sa graph.
Ang mga salik ng pagkakalibrate ay kinakalkula sa isang computer gamit ang EXCEL program, na bahagi ng Microsoft OFFICE package ng anumang bersyon. Upang kalkulahin ang mga kadahilanan ng pagkakalibrate sa programang ito, ang isang scatter diagram ay itinayo, kung saan ang mga sinusukat na halaga ay naka-plot sa kahabaan ng X axis, ang mga halaga ng sanggunian ay naka-plot kasama ang Y axis, at isang linya ng regression ay itinakda sa pamamagitan ng pinagmulan ng mga coordinate. Ang programa ay gumuhit ng linya ng pagkakalibrate at tinutukoy ang slope nito, na siyang nais na kadahilanan ng pagkakalibrate. Kung may nakitang mga gross error - ang mga puntos ay makabuluhang inalis mula sa linya ng pagkakalibrate sa graph, dapat silang alisin sa pagkalkula (binura ang buong linya sa talahanayan ng EXCEL). Ang resultang calibration factor ay ipinasok sa talahanayan sa Appendix 1 at ginagamit upang manu-manong ayusin ang pagkakalibrate ng device alinsunod sa mga tagubilin sa pagpapatakbo nito.
^ Pag-calibrate gamit ang mga na-stabilize na sample ng dugo na may mga sertipikadong halaga
Hangga't maaari, ang mga calibrator na partikular na idinisenyo ng tagagawa upang i-calibrate ang isang partikular na uri ng analyzer ay dapat gamitin. Ang mga error sa set point sa modernong hematology calibrators ay karaniwang pare-pareho sa mga medikal na pangangailangan. Gayunpaman, ang mga naturang calibrator ay hindi magagamit para sa lahat ng uri ng mga analyzer. Bilang karagdagan, dahil sa limitadong buhay ng istante (karaniwang hindi hihigit sa 45 araw), hindi laging posible na makakuha ng mga sample na hindi nag-expire.
Ang mga materyales sa kontrol ay hindi inilaan ng tagagawa para sa mga layunin ng pagkakalibrate: ang mga pagpapaubaya para sa mga halaga ay mas malawak, at ang mga pamamaraan ng sertipikasyon at kontrol sa produksyon ay hindi kasing higpit ng para sa mga calibrator. Kapag nag-calibrate, ang mga control material ay magagamit lamang bilang isang mapagkukunan ng impormasyon tungkol sa metrological na katangian ng device.
Dapat, gayunpaman, tandaan na kapag gumagamit ng parehong mga control na materyales at mga calibrator para sa mga layunin ng pagkakalibrate, ang mga tampok ng paghahanda ng sample at pagpapatakbo ng mga analyzer ay may malaking epekto sa mga bahagi ng sistematikong error. Ang mga nakakaimpluwensyang salik na ito ay hindi maaaring isaalang-alang kapag nag-calibrate sa mga komersyal na materyales. Bilang isang resulta, sa lahat ng mga kaso, ang pag-calibrate na ginawa ay dapat na ma-verify sa pamamagitan ng pagsusuri sa mga istatistika ng mga resulta na nakuha sa mga sample ng pasyente (mga indeks ng erythrocyte, mga normal na hanay).
5.2.1 Ang dalas ng pagkakalibrate ng mga hematology analyzer
Ang mga kinakailangan para sa dalas ng pagkakalibrate ay karaniwang nakapaloob sa mga tagubilin sa pagpapatakbo ng analyzer. Karaniwan, ang pagkakalibrate ay kinakailangan pagkatapos ng pagkumpuni o kapag ang makabuluhang drift ay nakita sa panloob na mga pamamaraan ng kontrol sa kalidad ng laboratoryo.
5.2.2 Pamamaraan sa pagkakalibrate
Ang pamamaraan ng pagkakalibrate ay isinasagawa alinsunod sa mga tagubilin sa pagpapatakbo para sa analyzer.
5.2.3 Pagsubaybay sa resulta ng pagkakalibrate
Ang kontrol na ito ay binubuo ng pagsusuri sa sample ng pagkakalibrate kaagad pagkatapos ng pagkakalibrate. Ang nakumpletong pagkakalibrate ay tinatanggap kung ang mga resulta ng pagsusuri ay tumutugma sa mga halaga ng pagkakalibrate, na isinasaalang-alang ang analytical variation ng analyzer.
5.2.4 Pag-verify ng pagkakalibrate gamit ang mga indeks ng pulang selula ng dugo
Ang pamamaraang ito ng pagsuri at pagpino sa pagkakalibrate ay sinasamantala ang katotohanan na ang mga average na halaga ng mga indeks ng pulang selula ng dugo - MCHC, MCH at MCV sa mga pasyente ay may maliit na pagkakaiba-iba at samakatuwid ay maaaring epektibong magamit para sa kontrol ng pagkakalibrate at karagdagang kontrol sa kalidad. Ang inirerekomendang bilang ng mga sample para sa pag-average ay 20. Maaaring gamitin ang anumang sample ng pasyente upang matukoy ang average na MCHC, habang ang mga pasyenteng may anemia ay dapat na hindi kasama upang matukoy ang mean na MCHC at MCV.
Maraming mga modernong hematology analyzer ang may built-in na mga programa para sa pagkalkula ng mga kasalukuyang average, na lubos na nagpapadali sa pagproseso ng data.
Ang mga target na halaga ng mga indeks ng erythrocyte kapag na-average ang higit sa 20 mga sample ng mga pasyente na may edad na 18 hanggang 60 taon, anuman ang kasarian, ay ipinapakita sa Talahanayan 4.
Talahanayan 4
Mga target na halaga ng mga indeks ng erythrocyte
Kung ang mga average na halaga na nakuha ay nasa labas ng control tolerance, nangangahulugan ito na ang MCV o Hgb o RBC calibration ay kailangang isaayos.
Kapag tinutukoy ang mga dahilan para sa hindi kasiya-siyang pagkakalibrate ng mga parameter ng pulang selula ng dugo kapag gumagamit ng mga komersyal na pagkakalibrate/kontrol na materyales, ang sumusunod na pagtatasa ng pagiging maaasahan ng mga sertipikadong halaga ng mga materyales ay dapat isaalang-alang:
Ang pinakatumpak at time-stable na parameter ay ang konsentrasyon ng mga pulang selula ng dugo;
Ang isang stable na parameter ay Hgb, ngunit maaaring depende ito sa mga reagents na ginamit (halimbawa, cyanogen o cyanogen-free);
Ang pinaka-hindi matatag na parameter ay MCV. Ang halaga ng MCV ay may posibilidad na magbago sa buong buhay ng istante ng materyal sa isang medyo malawak na hanay ng mga halaga. Kapag pinipino ang pagkakalibrate ng MCV, ang data na nakuha mula sa pagsusuri ng mga average na indeks ng pulang selula ng dugo ay nangunguna sa mga sertipikadong halaga sa mga na-stabilize na sample ng dugo.
Sa pag-aakalang tama ang pagkakalibrate ng RBC, ipinapakita ng Talahanayan 5 ang mga posibleng dahilan para ang mga average na halaga ng index ay bumaba sa labas ng control tolerance.
Talahanayan 5
Mga dahilan para sa paglampas sa mga average na halaga ng mga indeks ng erythrocyte
| Mga indeks ng erythrocytic | Average na halaga ng index | Average na halaga ng index | Average na halaga ng index | Average na halaga ng index |
| MCHC | Sa ibaba ng hangganan | Sa itaas ng hangganan | Sa itaas ng hangganan | Sa ibaba ng hangganan |
| MCH | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya | Sa itaas ng hangganan | Sa ibaba ng hangganan |
| MCV | Sa itaas ng hangganan | Sa ibaba ng hangganan | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya | Sa loob ng mga limitasyon ng pagpapaubaya |
| Dahilan | Masyadong mataas ang MCV | Ibinaba ang MCV | Masyadong mataas ang Hgb | Mababa ang Hgb |
Ang pamamaraan para sa pagkolekta ng klinikal na materyal sa isang test tube na may daluyan ng transportasyon:
1. Buksan ang takip ng test tube.
2. Gamit ang isang disposable sterile probe, kumuha ng naaangkop na discharge
biotope (vagina, urethra, cervical canal).
3. Ilipat ang probe na may klinikal na materyal sa isang test tube na may transport medium na 1.5 ml volume, kapag ang probe ay nakapatong sa ilalim ng test tube, ibaluktot ang manipis na bahagi ng probe na may karagdagang puwersa sa isang bingaw, pagkatapos ay masira patayin ito at iwanan ang probe sa test tube. Kung kinakailangan upang makakuha ng klinikal na materyal mula sa ilang biotopes ulitin ang pamamaraan, sa bawat oras na dalhin ang klinikal na materyal gamit ang isang bagong probe sa isang bagong tubo.
3. Isara nang mahigpit ang test tube gamit ang takip at lagyan ng label ito.
Mga tampok ng pagkuha ng klinikal na materyal mula sa cervical canal:
1. Ang klinikal na materyal ng cervical canal ay nakukuha pagkatapos magpasok ng gynecological speculum sa ari gamit ang urethral probe o cervical cytobrush (kailangan ng sapat na bilang ng mga epithelial cell para sa HPV testing!).
2. Bago kumuha ng klinikal na materyal, kailangang maingat na linisin ang pagbubukas ng cervical canal gamit ang sterile gauze swab at pagkatapos ay gamutin ang cervix ng sterile saline solution.
3. Pagkatapos ipasok ang urethral tube na 1.5 cm sa cervical canal, ito ay paikutin ng maraming beses (2-3 buong liko sa clockwise) at inalis. Kapag tinatanggal ang probe, kinakailangan upang ganap na pigilan ito sa paghawak sa mga dingding ng vaginal.
4. Ang nakuhang klinikal na materyal ay inilalagay sa isang test tube na may transport medium (tingnan sa itaas).
Mga tampok ng pagkuha ng klinikal na materyal mula sa puki:
Sa araw ng pagsusuri, ang mga babae ay hindi dapat magsagawa ng genital toileting o vaginal douching.
1. Ang klinikal na materyal mula sa puki ay nakukuha mula sa posterior o lateral fornix gamit ang vaginal o urethral probe sa pamamagitan ng pag-scrape mula sa ibabaw ng epithelium.
2. Dapat makuha ang klinikal na materyal BAGO magsagawa ng manu-manong pagsusuri.
3. Bago ang pagmamanipula, ang gynecological speculum ay maaaring basa-basa ng maligamgam na tubig, ang paggamit ng antiseptics para sa paggamot sa speculum ay kontraindikado.
4. Sa mga batang babae (virgo), ang klinikal na materyal ay nakukuha mula sa mucous membrane ng vaginal vestibule nang hindi gumagamit ng gynecological speculum.
5. Ang nakuhang klinikal na materyal ay inilalagay sa isang test tube na may transport medium (tingnan sa itaas).
Mga tampok ng pagkuha ng klinikal na materyal mula sa urethra sa mga kababaihan:
1. Ang klinikal na materyal mula sa urethra ay nakuha gamit ang isang urethral probe.
2. Bago kumuha ng clinical material, pinapayuhan ang pasyente na pigilin ang pag-ihi sa loob ng 1.5-2 oras.
3. Kung mayroong libreng urethral discharge, ang panlabas na urethral opening ay dapat linisin gamit ang cotton swab.
4. Kung walang libreng discharge, maaaring magsagawa ng light urethral massage.
5. Matapos ipasok ang instrumento sa urethra sa lalim na 1 cm, kinakailangan na isulong ito sa panlabas na pagbubukas, bahagyang pagpindot sa likod at gilid na mga dingding ng urethra (masakit ang mga paggalaw ng pag-ikot).
6. Ang nakuhang klinikal na materyal ay inilalagay sa isang test tube na may transport medium (tingnan sa itaas).
Upang pag-aralan ang materyal na nakuha mula sa ilang biotopes, ang pamamaraan ay paulit-ulit, sa bawat oras na gumagamit ng isang bagong sterile probe at isang bagong test tube!!!
Hindi katanggap-tanggap na paghaluin ang materyal mula sa cervical canal, vaginal contents at urethra sa isang tubo!
Mga tampok ng pagkuha ng klinikal na materyal mula sa urethra sa mga lalaki:
1.5–2 oras. Upang ibukod ang mga pagbaluktot sa mga resulta ng pagtukoy sa komposisyon ng microflora ng urogenital tract ng mga lalaki dahil sa pagkakaroon ng lumilipas na microflora sa urogenital tract sa loob ng tatlong araw bago kumuha ng biomaterial, sexual abstinence o ang paggamit ng protektadong pakikipagtalik ay inirerekomenda.
1. Bago kumuha ng scraping mula sa urethra, gamutin ang ulo ng ari ng lalaki sa lugar ng panlabas na pagbubukas ng urethra na may isang pamunas na moistened sa sterile saline solution.
2.Imasahe ang urethra. Kung may discharge na malayang dumadaloy mula sa urethra, alisin ito gamit ang dry swab.
3. Ang probe ay ipinasok sa urethra sa lalim na 1-2 cm. Ang mga epithelial cell ay kinukuskos sa ilang mga rotational na paggalaw at ang probe ay inililipat sa isang test tube na may transport medium, naputol at iniwan. Ang discharge ay kinokolekta sa sapat na dami. Ang katamtamang presensya ng mga impurities sa anyo ng mucus, dugo at nana ay katanggap-tanggap.
Pagkuha ng klinikal na materyal Saforeskin ng glans penis (GPP):
Bago kumuha ng biomaterial, pinapayuhan ang pasyente na pigilin ang pag-ihi
1.5–2 oras.
1. Gamit ang isang disposable probe, ang mga epithelial cell ay kiskisan mula sa kaukulang biotope (foreskin ng glans penis, preputial sac) at ang probe ay inililipat sa isang test tube na may transport medium, naputol at iniwan.
Mga kondisyon para sa pag-iimbak at pagdadala ng biomaterial:
1. Ang mga tubo na may nakuhang klinikal na materyal ay dapat na may label.
2. Ang kasamang dokumento ng referral ay dapat magsaad ng: buong pangalan, edad ng pasyente, klinikal na materyal, iminungkahing pagsusuri, mga indikasyon para sa pagsusuri, petsa at oras ng pagkolekta ng sample, pangalan ng institusyon (unit) na nagpapadala ng klinikal na materyal.
3. Kung ang oras ng transportasyon ng klinikal na materyal mula sa sandali ng koleksyon hanggang sa sandali ng paghahatid nito sa laboratoryo ay hindi hihigit sa 24 na oras, kung gayon ang test tube na may klinikal na materyal ay dapat na nakaimbak at maihatid sa laboratoryo sa temperatura ng isang refrigerator ng sambahayan (+ 4 + 10 ° C), nang walang pagyeyelo.
4. Kung imposibleng maghatid ng klinikal na sample sa laboratoryo sa loob ng 24 na oras, pinapayagan ang isang solong pagyeyelo at pag-imbak ng klinikal na sample sa temperatura na -20°C hanggang sa isang buwan.Aktibo
MU 4.2.2039-05
MGA INSTRUKSYON SA METODOLOHIKAL
4.2. MGA PARAAN NG PAGKONTROL. BIOLOGICAL AT MICROBIOLOGICAL FACTORS
Teknolohiya para sa pagkolekta at pagdadala ng mga biomaterial sa microbiological
mga laboratoryo
Petsa ng pagpapakilala 2006-07-01
2. INIREREKOMENDASYON PARA SA PAG-Aproba ng Komisyon sa Mga Pamantayan sa Sanitary at Kalinisan ng Estado sa ilalim ng Serbisyong Pederal para sa Pangangasiwa ng Proteksyon ng Mga Karapatan ng Consumer at Kapakanan ng Tao noong Oktubre 6, 2005 (Protocol No. 3).
3. INAPRUBAHAN AT PINAG-EPEKTO ng Pinuno ng Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare, Chief State Sanitary Doctor ng Russian Federation G. G. Onishchenko noong Disyembre 23, 2005.
5. IPINAKILALA SA UNANG BESES.
1 lugar ng paggamit
1 lugar ng paggamit
1.1. Ang mga alituntunin ay nagtakda ng mga patakaran para sa pagkolekta at pagdadala ng mga biological na materyales sa microbiological laboratories upang mapabuti ang kalidad ng mga resulta ng pananaliksik sa laboratoryo at ayusin ang mga anti-epidemya at preventive na mga hakbang, pati na rin ang pag-iwas sa mga nosocomial na impeksyon sa mga medikal na tauhan at mga pasyente.
1.2. Ang mga alituntunin ay nilayon para gamitin ng mga awtoridad at organisasyon ng Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Welfare, at maaari ding gamitin ng mga awtoridad at organisasyon sa kalusugan.
2. Pangkalahatang mga probisyon
2.1. Ang pagkuha ng maaasahang data sa pagtukoy ng mga pinagmumulan ng impeksyon ay kinakailangan para sa napapanahon at epektibong organisasyon ng mga hakbang na anti-epidemya at pag-iwas, pagtatasa ng antas ng impeksyon sa populasyon sa panahon ng epidemiological surveillance.
2.2. Ang binuo na pamamaraan para sa pagkolekta at pagdadala ng mga biological na materyales sa microbiological laboratories ay magbabawas sa antas ng mga preanalytical error at mapabuti ang kalidad ng mga laboratoryo sa objectifying resulta.
2.4. Ang mga alituntunin ay maaaring gamitin kapag nagsasagawa ng epidemiological surveillance ng antimicrobial resistance ng mga nakakahawang ahente na nakahiwalay at natukoy sa laboratoryo, na nag-optimize sa paggamit ng mga antimicrobial na gamot at mga hakbang sa larangan ng pag-iwas, kontrol at pagpigil ng paglaban sa lokal, rehiyonal at pambansang antas.
3. Pangkalahatang mga kinakailangan para sa pagkolekta ng mga sample ng biological na materyal para sa microbiological research
3.1. Upang maprotektahan ang mga tauhan ng medikal at mga pasyente mula sa impeksyon kapag nangongolekta ng mga sample ng biomaterial at inihatid ang mga ito sa laboratoryo, kinakailangan:
huwag mahawahan ang panlabas na ibabaw ng mga pinggan kapag nangongolekta at naghahatid ng mga sample;
huwag dumihan ang mga kasamang dokumento (direksyon);
bawasan ang direktang kontak ng biomaterial sample gamit ang mga kamay ng medikal na manggagawa na kumukuha at naghahatid nito sa laboratoryo;
gumamit ng sterile na disposable o inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa iniresetang paraan ng mga lalagyan (mga lalagyan) para sa pagkolekta, pag-iimbak at paghahatid ng mga sample;
transportasyon ng mga sample sa mga carrier o mga pakete na may hiwalay na mga pugad;
obserbahan ang mga kondisyon ng aseptiko upang maiwasan ang impeksyon ng pasyente sa panahon ng pagpapatupad ng mga invasive na hakbang;
mangolekta ng mga sample sa mga sterile na disposable o glass container (hindi kontaminado ng biomaterial, hindi nasira ng mga bitak, tinadtad na mga gilid at iba pang mga depekto)
3.2. Ang mga biomaterial na sample ay dapat kolektahin tulad ng sumusunod:
bago magsimula ang antibacterial therapy, kung hindi ito posible - kaagad bago ang paulit-ulit na pangangasiwa (pagkuha) ng mga gamot;
sa dami (timbang, dami) na kinakailangan upang maisagawa ang pagsusuri, dahil ang hindi sapat na dami ng biomaterial para sa pananaliksik ay humahantong sa mga maling resulta;
na may kaunting kontaminasyon ng materyal na may normal na microflora, dahil ang presensya nito ay humahantong sa maling interpretasyon ng mga resulta na nakuha, halimbawa, mula sa pag-aaral ng plema, mga sample mula sa ilong, pharynx (lalamunan), maselang bahagi ng katawan, atbp.
3.3. Kapag kumukuha ng sample, siguraduhin na sa laboratoryo, kapag binubuksan ang lalagyan na may biomaterial, walang aerosol na nabuo: ang mga sample ng dugo at iba pang mga likido sa katawan ay maingat na inililipat mula sa isang syringe nang walang pagbuo ng bula sa isang tuyo at/o lalagyan. napuno ng isang daluyan (anticoagulant).
3.4. Sa direksyon para sa pag-aaral ipahiwatig: apelyido, unang pangalan, patronymic ng pasyente; taon ng kapanganakan; ang departamento kung saan siya matatagpuan; numero ng medikal na kasaysayan (outpatient card); diagnosis; materyal na ipinadala para sa mga layunin ng pananaliksik at pananaliksik; petsa at oras ng pagkolekta ng materyal (oras); mga antibacterial (immune) na gamot, kung ang sample ay kinuha laban sa background ng antibiotic at/o immunotherapy; apelyido, unang pangalan, patronymic ng dumadating na manggagamot (consultant) na nagpapadala ng sample para sa pagsusuri. Kapag nagpapadala ng mga biomaterial na nakuha sa panahon ng autopsy, ang departamento kung saan namatay ang pasyente ay ipinahiwatig din.
3.5. Bago mangolekta ng isang sample, lalo na kapag gumagamit ng mga invasive na pamamaraan, ang posibilidad ng panganib at benepisyo sa pasyente ay isinasaalang-alang, pati na rin ang kahalagahan ng partikular na uri ng biomaterial na ito para sa layunin ng objectifying ang klinikal na diagnosis at pagtatasa ng patuloy o nakaplanong therapeutic. mga hakbang.
4. Pangkalahatang mga kinakailangan para sa paghahatid ng mga biomaterial na sample sa microbiological laboratory
4.1. Ang lahat ng mga nakolektang sample ay ipinapadala kaagad sa microbiological laboratory pagkatapos matanggap, maliban sa mga kaso ng paggamit ng mga lalagyan na may transport media na inaprubahan para gamitin para sa mga layuning ito sa Russian Federation sa inireseta na paraan.
Ito ay kinakailangan para sa:
pagpapanatili ng posibilidad na mabuhay ng mga pathogen at ang posibilidad ng paghihiwalay ng mga microorganism na nangangailangan ng mga espesyal na kondisyon ng paglilinang (Haemophylus, atbp.);
pinipigilan ang labis na paglaki ng mabilis na paglaki at aktibong mga mikroorganismo;
pagpapanatili ng ratio ng mga paunang konsentrasyon ng mga isolates sa pagkakaroon ng mga asosasyon ng microbial sa sample;
pagbabawas ng oras ng sample contact sa ilang antiseptics na ginagamit sa lokal, na maaaring may aktibidad na antibacterial;
objectification ng clinical diagnosis ng isang nakakahawang-namumula na sakit at pagtatasa ng mga resulta ng therapy.
4.2. Pinapayagan na gumamit ng mga alternatibong pamamaraan upang madagdagan ang oras na kinakailangan upang maihatid ang biomaterial sa laboratoryo.
Ang mga sample ay iniimbak sa refrigerator sa temperaturang 2-8 °C, maliban sa mga kaso na nakalista sa ibaba.
4.2.1. Kapag ang sample ay naka-imbak sa isang espesyal na lalagyan ng transportasyon (transport system), naaprubahan para sa paggamit sa inireseta na paraan, na isang sterile disposable tube na may agar o likidong transport medium at isang swab probe na naka-mount sa isang stopper at sterile na nakabalot sa tube. . Sa ganitong mga lalagyan, ang mga sample ay iniimbak sa temperatura ng silid (18-20 °C). Ang media ng transportasyon, mga espesyal na siksik na may at walang activate na carbon, ay ginagawang posible upang matiyak ang pagpapanatili ng posibilidad na mabuhay ng mga microorganism na nangangailangan ng mga espesyal na kondisyon ng paglilinang sa loob ng 48-72 na oras.
Para sa mga pagsusuri para sa anaerobes at fecal flora, gumamit ng mga espesyal na lalagyan na may transport medium, mga test tube na may media para sa paghihiwalay ng Campylobacter at Helicobacter, na inaprubahan para gamitin sa inireseta na paraan. Ang ganitong mga kapaligiran ay lumilikha ng isang anabiotic na kapaligiran para sa mga microorganism, na tumutulong upang mabawasan ang kanilang metabolismo, pagbawalan ang paglaki, at maiwasan ang mga ito mula sa pagkatuyo at pag-iipon ng mga produktong basura.
Ang bawat sample na nakolekta sa isang likidong daluyan ay lubusang pinaghalo sa daluyan.
4.2.2. Kapag ang dugo ay nilinang sa sabaw, pagkatapos ay pagkatapos makuha ang sample ay naka-imbak sa isang termostat sa temperatura na 35-37 ° C.
Kung ang mga sample ay nakolekta sa mga espesyal na lalagyan para sa kasunod na pananaliksik na may dalawang yugto na kapaligiran, dapat silang itabi sa temperatura ng silid (18-20 °C).
4.2.3. Kapag may posibleng presensya ng mga microorganism na sensitibo sa temperatura (Neisseria sp.), ang mga sample ay iniiwan sa temperatura ng silid (18-20 °C).
4.3. Upang maghatid ng mga sample na sinuri para sa pagkakaroon ng aerobes at facultative anaerobes, gamitin ang:
disposable sterile dry tubes na may built-in na swab probe (tubes) o mga lalagyan na may transport medium, na inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation sa inireseta na paraan; Pinapayagan na gumamit ng sterile glass tubes, na selyadong may gas-permeable stopper na may built-in na swab probe, na inihanda sa laboratoryo;
disposable sterile container na may screw cap (pinapayagan ang baso na may gas-permeable stopper) - para sa pagkolekta ng mga sample ng ihi, plema, feces, broncho-alveolar lavage, biopsy (piraso ng tissue) na materyal;
sterile disposable na may screw cap o glass tubes - para sa pagkolekta ng sterile liquids, broncho-alveolar lavage na hiwalay sa drainages o scrapings;
sterile Petri dishes - para sa pagkolekta ng mga sample ng buhok o para sa pagdadala ng mga scrapings na may mga marka sa ilalim ng pinggan;
espesyal na sterile nasopharyngeal at urogenital probes-tampons na may aluminum axis (axis diameter - 0.9 mm) at isang maliit na cotton o viscose swab sa dulo (tampon diameter - 2.5 mm), naka-mount sa isang stopper sealing isang sterile disposable glass tube - para sa mga sample mula sa nasopharynx para sa B. pertusis at mula sa urethra sa mga lalaki.
4.4. Upang maghatid ng mga sample na sinuri para sa pagkakaroon ng mga anaerobes, ang mga lalagyan na may espesyal na transport media at mga test tube na may thioglycollate medium ay ginagamit; mga test tube na may media para sa paghihiwalay ng Campylobacter at Helicobacter, na inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan. Ang sample na nakolekta sa isang likidong daluyan ay lubusang pinaghalo dito. Ang mga sumusunod na pamamaraan ay inirerekomenda para sa pagkuha ng mga sample:
ang paglabas ng paagusan na ginagamit para sa aktibong aspirasyon ng mga cavity ay sinipsip ng isang sterile syringe na may masikip na piston sa dami ng 2-4 ml; ang isang sterile na karayom na natatakpan ng isang sterile cotton swab ay inilalagay sa napuno na hiringgilya at ang labis na hangin ay tinanggal mula sa hiringgilya; ang isang cotton swab ay itinapon sa isang disinfectant solution; ang dulo ng karayom ay ipinasok sa isang sterile rubber stopper at sa form na ito ang syringe na may materyal ay inihatid sa laboratoryo;
ang mga nilalaman ng foci ng impeksyon at mga cavity, na nakuha sa pamamagitan ng pagbubutas sa kanila, ay nakolekta sa dami ng 2-4 ml gamit ang 2-, 5-, 10-ml syringes na may masikip na piston; ang labis na hangin ay inalis mula sa hiringgilya sa pamamagitan ng pagtakip sa karayom ng isang sterile cotton swab, na pagkatapos ay itatapon sa isang disinfectant solution; ang karayom ay nadidisimpekta sa pamamagitan ng pagpahid ng pamunas na binasa ng 70% ethyl alcohol; Upang mai-seal, ang dulo ng karayom ay ipinasok sa isang sterile rubber stopper at sa form na ito ang syringe na may materyal ay inihatid sa laboratoryo.
Kapag nangongolekta ng isang malaking dami ng materyal (3 ml o higit pa), ang anaerobic bacteria ay maaaring manatiling mabubuhay sa loob ng 24 na oras sa temperatura ng silid (18-20 ° C).
Kung mayroon lamang ilang patak ng discharge, inililipat ito mula sa isang syringe patungo sa isang maliit na lalagyan o isang test tube na may transport medium kaagad pagkatapos matanggap (ang mga lalagyan na may transport media ay natanggap sa laboratoryo sa araw bago).
Kung pinaghihinalaan ang isang anaerobic na impeksyon, ang mga piraso ng tissue (biopsy material) ay kinokolekta sa mga sterile disposable container na may screw cap (pinapayagan sa isang glass container na may ground-in lid) at ihahatid kaagad sa laboratoryo.
4.5. Upang maghatid ng mga sample na sinuri para sa pagkakaroon ng mga virus, ang mga espesyal na lalagyan na may likidong daluyan ay ginagamit upang mapanatili ang mga virus.
5. Mga sample ng iba't ibang uri ng biomaterial at kapaligirang nakapalibot sa pasyente
Talahanayan 1
Glassware na ginagamit sa pagdadala ng mga sample sa laboratoryo
|
Pinagmulan at uri ng klinikal na materyal |
Mga produktong ginagamit para sa sample na paghahatid |
|
Mga espesyal na lalagyan ng transportasyon na may daluyan, mayroon o walang antibiotic neutralizer at reagents na sumisira sa mga selula ng dugo, na inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation sa inireseta na paraan; two-phase medium sa mga bote |
|
|
central nervous system |
|
|
alak |
Mga sterile na disposable tube na may takip ng tornilyo; sterile glass tubes na may cellulose o cotton-gauze stopper |
|
Materyal para sa mga abscess ng utak at biopsy na materyal para sa mga nagpapaalab na proseso sa central nervous system |
Isang hiringgilya na may karayom na ipinasok sa isang sterile rubber stopper; isang test tube na may thioglycollate medium, sarado na may sterile rubber stopper; mga lalagyan ng transportasyon na may daluyan para sa pagpapanatili ng mga anaerobes |
|
Mas mababang respiratory tract |
|
|
Biopsy material ng baga at trachea; plema, natural na expectorated at sapilitan; pag-scrape mula sa bronchi |
Steril na disposable container na may screw cap (para sa pagkolekta ng plema); inihanda ng laboratoryo ang sterile glass container |
|
Tracheal aspirate, broncho-alveolar lavage, bronchial washings |
Steril na disposable sputum collection container na may screw cap; mahigpit na selyadong sterile glass tube |
|
Transtracheal at lung aspirate |
Mga espesyal na lalagyan ng transportasyon na may daluyan para sa anaerobes; isang hiringgilya na may isang karayom na ipinasok sa isang sterile goma stopper; lalagyan na may daluyan ng thioglycollate; sterile disposable plastic container na may screw cap; mahigpit na selyadong tubo |
|
Itaas na respiratory tract |
|
|
Mga pamunas mula sa ilong, lalamunan, nasopharynx, panlabas na tainga |
Isang sterile disposable swab probe na naka-mount sa isang sterile dry tube (tubser), o isang transport container na may naaangkop na medium; sasakyang-dagat para sa mga virus; sterile glassware na naka-mount sa laboratoryo |
|
Nasal lavage, nasophageal aspirate |
Steril na disposable container na may screw cap; sasakyang-dagat para sa mga virus |
|
Ang fluid na nakuha sa pamamagitan ng tympanocentesis, sinus aspirate na nakuha sa pamamagitan ng needle aspiration |
Isang hiringgilya na may karayom, dinidisimpekta pagkatapos ng pagmamanipula gamit ang isang pamunas na binasa ng 70% na ethyl alcohol, at nakadikit sa isang sterile rubber stopper; maaari mong ilipat ang materyal mula sa hiringgilya sa isang sterile na disposable o glass tube o isang espesyal na sisidlan na may daluyan para sa pagdadala ng mga anaerobes |
|
Tissue na nakuha sa panahon ng operasyon ng ilong, pharynx, tainga |
Steril na disposable container na may screw cap; isang test tube na may thioglycollate o iba pang daluyan ng transportasyon, mahigpit na sarado gamit ang isang sterile rubber stopper; mahigpit na nakasara ang sterile na disposable na plastic o glass tube |
|
Mga scrapings mula sa conjunctiva ng sulok ng mata |
Mga pahid sa sterile, walang grasa na mga glass slide; materyal na dinadala sa isang espesyal na lalagyan ng transportasyon na may medium o inoculated sa isang nutrient medium |
|
Intraocular fluid |
Mga pahid sa sterile, walang grasa na mga glass slide; materyal na dinadala sa isang espesyal na lalagyan ng pagpapadala na may medium para sa anaerobes o isang hiringgilya na may karayom na na-pre-disinfect na may 70% na ethyl alcohol na ipinasok sa isang sterile rubber stopper |
|
Ang paglabas ay kinuha gamit ang isang sterile glass rod o isang sterile cotton swab mula sa mucous membrane ng lower transitional fold, mula sa gilid ng eyelids, sa kaso ng ulcer - mula sa cornea (pagkatapos ng anesthesia), sa kaso ng angular conjunctivitis - mula sa ang mga sulok ng talukap ng mata |
Isang sterile na disposable o glass tube na may sabaw ng asukal, kung saan naka-install ang isang swab probe o isang sterile glass rod, na ginagamit upang kumuha ng sample; espesyal na lalagyan ng transportasyon na may kapaligiran ng virus |
|
Lihim mula sa lacrimal sac |
Isang disposable sterile swab probe na naka-mount sa isang sterile dry tube (tubser) o glass tube |
|
Sistema ng genitourinary |
|
|
Katamtamang dami ng malayang dumadaloy na ihi; mula sa ileal canal na ginamit upang lumikha ng isang artipisyal na pantog; mula sa isang catheter sa mga pasyente ng intensive care. Pag-flush ng pantog. Sample na nakuha sa panahon ng bilateral urethral catheterization |
Steril na disposable urine collection container na may screw cap o sterile disposable tube na may takip; o isang espesyal na disposable urine collection tube. Kapag gumagamit ng sterile glass tube na may cellulose o cotton-gauze stopper, mag-ingat na huwag ibabad ang stopper sa materyal (sample volume 10-20 ml) |
|
Sample na nakuha sa pamamagitan ng suprapubic aspiration |
Isang sterile syringe na walang karayom, sarado na may sterile rubber stopper; isang sterile syringe na may karayom, na dating na-disinfect ng 70% ethyl alcohol at ipinasok sa isang rubber stopper |
|
Materyal mula sa mga babaeng genital organ |
|
|
Mga likido: amniotic, fallopian tubes, Bartholin |
Espesyal na lalagyan ng transportasyon na may daluyan para sa anaerobes; isang hiringgilya na walang karayom, sarado na may isang sterile goma stopper; isang hiringgilya na may karayom na ginagamot sa 70% na alkohol at ipinasok sa isang sterile rubber stopper (sample volume 1-2 ml) |
|
Mga sample mula sa cervical canal, urethra, puki |
Isang disposable sterile probe-tampon, na naka-mount sa isang sterile dry test tube (tubeser) o isang transport container na may espesyal na medium; isang swab probe na naka-mount sa isang cellulose o cotton-gauze stopper ng isang sterile glass tube. |
|
Mga sample ng materyal mula sa endometrium |
Isang sterile na disposable container na may screw cap o isang test tube, o isang transport container na may medium para sa anaerobes; sterile glassware |
|
Panlabas na materyal ng genitalia |
Isang sterile syringe na walang karayom, sarado na may sterile rubber stopper; isang slide na may smear na natatakpan ng isang coverslip para sa pagtukoy ng T. pallidum; isang swab probe na naka-mount sa isang sterile disposable tube (tube) o glass tube; isang espesyal na tubo ng transportasyon na may daluyan na may activated carbon para sa pagpapanatili ng gonococci at mga lalagyan ng transportasyon para sa mga virus at chlamydia; mga pahid sa mga glass slide upang makita ang iba pang mga impeksiyon na nakukuha sa pakikipagtalik |
|
Materyal mula sa male genital organ |
|
|
Mga urethral swab |
Isang probe-tampon sa isang aluminum axis (urethral probe-tampon), na naka-mount sa sterile disposable (tubser) o glass tubes; |
|
Ibulalas, tamud |
Steril na disposable container na may screw cap; sterile tube o tube, disposable o salamin |
|
Materyal ng epididymis sa epididymitis |
Isang espesyal na lalagyan ng pagpapadala na may daluyan para sa anaerobes o lalagyan na may daluyan ng thioglycollate; isang sterile disposable container na may screw cap o sterile glass tube na may cellulose o cotton-gauze stopper |
|
sugat sa titi |
Isang hiringgilya na walang karayom, sarado na may sterile rubber stopper; isang slide na may pahid ng T. pallidum na natatakpan ng isang coverslip; isang swab probe na naka-mount sa isang sterile disposable tube (tube) o glass tube; mga lalagyan ng pagpapadala para sa mga virus at chlamydia; pamunas upang makita ang iba pang mga impeksiyon na nakukuha sa pakikipagtalik |
|
Materyal para sa pinaghihinalaang gonorrhea |
|
|
Mga pahid mula sa anus, cervical canal, urethra, puki |
Isang probe-tampon na naka-mount sa isang sterile na disposable (tubeser) o glass tube; espesyal na transport tube na may activated carbon medium para mapanatili ang gonococci sa loob ng 48 oras o higit pa |
|
Gastrointestinal tract |
|
|
Oral cavity |
Isang probe-tampon na naka-mount sa isang sterile na disposable (tubeser) o glass tube; sterile na disposable o glass container para sa pagkolekta ng oral fluid |
|
Gastric lavage o lavage fluid; duodenal aspirate; sample na nakuha sa panahon ng sigmoidoscopy; materyal na biopsy sa tumbong |
Steril na disposable container na may screw cap; isang espesyal na sterile na lalagyan para sa pagkolekta ng plema; |
|
Rectal swab |
Isang disposable sterile probe-tampon, na naka-mount sa isang sterile dry test tube (tubeser); o isang sterile tube na may espesyal na daluyan ng transportasyon; probe-tampon na gawa sa hindi kinakalawang na materyal, na inilagay sa isang cellulose o cotton-gauze stopper ng isang sterile glass tube |
|
Mga dumi para sa pagkakaroon ng mga impeksyon sa bituka ("disgroup"), Helicobacter, Campylobacter |
Steril na tubo na may pamunas sa solusyon ng asin na may gliserin; transport container na may medium para sa anaerobes sa fecal sample, na may espesyal na media na may at walang activated carbon para sa paghihiwalay ng Campylobacter sp. at Helicobacter sp.; probe-tampon sa isang tuyo, sterile na disposable tube (tubeser); sterile glass tube na naka-mount na may swab probe sa isang metal wire na gawa sa titanium, steel, aluminum. Hindi pinapayagan na gumamit ng tampon na may kahoy na axis |
|
Mga feces para sa pagkakaroon ng dysbacteriosis ayon sa generic at species na komposisyon ng microbes ("para sa flora") |
Espesyal na lalagyan ng transportasyon na may media para sa mga anaerobes sa mga sample ng fecal, mayroon at walang activated carbon media para sa paghihiwalay ng Campylobacter sp. at Helicobacter sp., na inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan; probe-tampon sa isang test tube na may saline solution na may gliserin sa isang sterile disposable o glass tube; isang espesyal na disposable sterile na lalagyan na may takip ng tornilyo; lalagyan ng salamin na naka-mount sa laboratoryo |
|
Mga feces para sa pagkakaroon ng dysbacteriosis na may quantitative accounting ng mga nakahiwalay at natukoy na microbes ("para sa dysbacteriosis") |
Mga espesyal na sterile disposable container na may screw cap at spatula para sa pagkolekta ng materyal at pagkuha ng sample para sa kultura, na may karaniwang timbang; espesyal na sterile glass container na naka-mount sa laboratoryo |
|
Balat at subcutaneous tissue |
|
|
Ulcers, nodules (nodular thickenings), mababaw, mababaw na sugat (purulent; burns); malalim na sugat o abscesses, buto |
Mga espesyal na sterile na disposable na lalagyan na may takip ng tornilyo; sterile tubes na may stoppers, disposable o salamin, 5 ml; mga lalagyan na may espesyal na media para sa anaerobes |
|
Exudate ng subcutaneous at soft tissues; malambot na tissue aspirate |
Isang sterile syringe na walang karayom, sarado na may sterile rubber stopper; isang hiringgilya na may karayom, na dating na-disinfect ng 70% ethyl alcohol at nakadikit sa isang rubber stopper |
|
Mga sterile na likido sa katawan, hindi kasama ang dugo, cerebrospinal fluid, ihi (tingnan sa itaas) |
|
|
Mga likido |
|
|
Pleural, peritoneal, ascitic, articular, synovial |
Steril na disposable container na may screw cap; isang saradong hiringgilya na walang karayom o may karayom, na dati nang nadidisimpekta ng 70% ethyl alcohol at ipinasok sa isang sterile rubber stopper |
|
Biomaterial para sa PCR diagnostics |
|
|
Dugo; iba pang likido sa katawan |
Steril, disposable, stoppered 1.5 ml tubes na may anticoagulant. Ang tubo ay baligtad ng 3-5 beses upang ihalo ang sample sa anticoagulant. Paghahatid sa laboratoryo - sa isang rack na gawa sa mga materyales na maaaring isterilisado sa isang autoclave |
|
materyal na biopsy; scrapings; plema at iba pang uri ng biomaterial |
Sterile dry disposable Eppendorf tubes at iba pang katulad nito. Paghahatid sa laboratoryo - sa isang espesyal na rack na gawa sa mga materyales na maaaring isterilisado sa isang autoclave |
|
Mga halimbawa ng kapaligiran ng pasyente |
|
|
Hangin |
Sterile Petri dish, disposable (=90 mm) o salamin (=100 mm) na may siksik na nutrient media. Paghahatid sa laboratoryo sa mga espesyal na dala na lalagyan |
|
Mga paghuhugas mula sa mga bagay sa kapaligiran na nakapalibot sa pasyente |
|
|
Mga pagsubok upang matukoy ang sterility |
|
|
Dugo at mga bahagi ng dugo mula sa departamento ng koleksyon |
Ang mga lalagyan na may inihandang materyal ay inihahatid sa laboratoryo sa mga espesyal na dala na lalagyan |
|
Mga flushes mula sa mga medikal na instrumento, mga hose ng kagamitan na ginagamit sa intensive care at anesthesiology department, pati na rin sa mga operating room; mga kamay ng mga medikal na tauhan; linen |
Ang mga sterile swab probe ay naka-mount sa mga transparent na tubo na naglalaman ng isang malinaw, walang kulay na likidong medium. |
|
Kirurhiko materyal: mga tampon, napkin, turundas, cotton swabs sa isang kahoy na axis |
Steril na transparent na test tube na may mga stopper na naglalaman ng malinaw na walang kulay na likidong medium na may 3-5 sterile glass beads. |
|
Suture material: catgut na nakaimbak sa operating room sa isang alkohol na solusyon ng yodo |
Steril na test tube (bote na may stopper) na may neutralizer solution (sodium hyposulfite) |
|
Silk, nylon, monomer synthetic threads na nakaimbak sa isang alcohol solution sa operating room |
Isang sterile test tube na may stopper na naglalaman ng sterile distilled water bilang wash liquid. |
|
Mga paghuhugas mula sa lugar ng kirurhiko ng pasyente |
Bago iproseso ang patlang: sa mga transparent na tubo na puno ng isang malinaw na likidong nutrient medium. |
|
Mga pagsusuri upang matukoy ang mga immunological na kadahilanan ng anti-infective defense system |
|
|
Dugo at iba pang mga likido sa katawan upang matukoy ang mga kadahilanang proteksiyon ng humoral |
Mga disposable syringes-test tubes (mga vacutainer); sterile disposable tubes na may screw cap; sterile glass tubes na may sterile rubber, cellulose o cotton-gauze stoppers. Ang mga sample ay inihahatid sa laboratoryo sa isang espesyal na rack na gawa sa mga materyales na maaaring isterilisado sa isang autoclave. |
|
Dugo at iba pang mga likido sa katawan upang matukoy ang mga cellular protective factor |
Mga sterile na disposable tube na may takip ng tornilyo; mga sterile glass tubes na mahigpit na sarado gamit ang sterile rubber stopper. Mga disposable tube na may anticoagulant, napapailalim sa centrifugation. Ang paghahatid sa laboratoryo ay isinasagawa sa isang espesyal na rack na gawa sa mga materyales na napapailalim sa isterilisasyon sa isang autoclave. |
|
Mga pahid upang matukoy ang mga bacterial at viral antigens (halimbawa, kung pinaghihinalaang mga impeksiyon na nakukuha sa pakikipagtalik) |
Steril, defatted glass slide; para sa T. pallidum, ang slide ay dapat na sakop ng isang coverslip. Ang paghahatid sa laboratoryo ay isinasagawa sa isang disposable container o sterile disposable o glass Petri dish sa mga espesyal na lalagyan. |
Tandaan. Ang mga specimen ng nana, likido, at tissue ay dapat dalhin sa laboratoryo sa espesyal, sterile, disposable na lalagyan na may mga takip ng tornilyo. Probes-sampons - tuyo sa sterile disposable tubes (tubes) o sa mga lalagyan na may transport medium, kung ang materyal ay hindi maihahatid kaagad sa laboratoryo pagkatapos kunin ang sample. Para sa mga layuning ito, maaari mong gamitin ang transport media, incl. sa mga disposable tubes, na nakabalot sa isang sterile swab probe, na inaprubahan para sa paggamit sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan. Ang mga probe-swab ay ginawa (inihanda) gamit ang isang bilang ng mga materyales: para sa swab mismo (cotton-gauze, cotton, viscose, dacron), para sa axis ng probe-swab (kahoy, plastik, hindi kinakalawang na metal - titanium, bakal, aluminyo) at siksik na agar media : may at walang karbon para sa anaerobes.
Maraming mga klinikal na makabuluhang anaerobes, halimbawa, Clostridium perfringens, Bacteroides fragilis, ay medyo mapagparaya sa pagkakaroon ng oxygen at mahusay na napanatili sa malaking dami ng nana, mga sample ng likido at mga tisyu ng katawan, pati na rin sa isang swab probe sa espesyal na transportasyon o thioglycollate media.
Ang mas sensitibo sa oxygen (halimbawa, fusobacteria) ay mahusay ding napanatili sa isang sample ng biological na materyal, at kung ang materyal ay inoculated sa loob ng 2-3 oras mula sa sandali ng koleksyon nito, kung gayon walang espesyal na pansin ang kinakailangan sa paraan ng paghahatid. Ang mga anaerobes na nangangailangan ng mga espesyal na kondisyon sa paglilinang ay hindi mananatiling mabubuhay sa isang swab probe sa isang transport container na may medium na hindi nilayon para sa paghahatid ng mga anaerobes, maliban sa mga container na may espesyal na transport media o thioglycollate.
Kasabay nito, ang mga mikroorganismo na ito ay lumalaki ng 5-7 araw na mas mahaba kaysa sa panahon kung saan ang karamihan sa mga praktikal na laboratoryo ay nag-incubate ng mga pagkaing may binhi na may materyal para sa paghihiwalay at pagkakakilanlan ng mga aerobes at facultative anaerobes. Para sa kadahilanang ito, sa mga ordinaryong praktikal na laboratoryo, tila hindi praktikal na regular na subukan ang pagkakaroon ng mga anaerobes gamit ang mga espesyal na transport anaerobic na lalagyan na may media, at maaaring limitahan ng isa ang ating sarili sa mga tubo na may daluyan ng thioglycollate.
Upang mangolekta at maghatid ng mga sample, gumamit ng media, mga lalagyan, mga tool at materyales na inaprubahan para magamit sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan.
6. Mga panuntunan at pamamaraan para sa pagkuha ng mga sample ng iba't ibang uri ng biological na materyal para sa microbiological na pananaliksik
Inirerekomenda na ang anumang sample na nangangailangan ng paggamit ng mga invasive na pamamaraan ay makuha mula sa isang pasyente ng isang manggagamot (maliban sa isang sample ng dugo na maaaring kolektahin ng isang procedural nurse).
Kung kinakailangan upang mangolekta ng materyal gamit ang isang swab probe sa isang bukas na surgical surface o sa kaso ng iba pang invasive na interbensyon, ito ay pinahihintulutan na gumamit ng mga yari na swab probe na may internasyonal na antas ng kaligtasan ng hindi bababa sa Class IIA, na inaprubahan para sa paggamit para sa mga ito. layunin sa Russian Federation sa inireseta na paraan.
6.1. Sampol ng dugo
Ang mga sample upang matukoy ang pagkakaroon ng mga biological agent sa dugo (bacteremia, viremia, atbp.) Ay nakukuha sa pamamagitan ng venipuncture ng peripheral veins (karaniwan ay ang mga ugat ng siko), arteries, o mula sa takong ng mga bagong silang.
Ang pagkolekta ng sample mula sa indwelling intravenous o intra-arterial catheters ay pinapayagan lamang sa mga kaso ng pinaghihinalaang catheter-associated infection o ang posibilidad na makuha ito sa pamamagitan ng venipuncture.
6.1.1. Sa acute sepsis, meningitis, osteomyelitis, arthritis, acute untreated bacterial pneumonia at pyelonephritis, 2 sample ang kinokolekta mula sa dalawang vessel o dalawang seksyon ng blood vessel bago simulan ang antibacterial therapy.
6.1.2. Kung pinaghihinalaan mo ang pagkakaroon ng endocarditis at matamlay na sepsis na may maliit (10-30 CFU/ml) na konsentrasyon ng pathogen sa sirkulasyon:
sa pagkakaroon ng isang talamak na proseso, 2 mga sample ang nakolekta mula sa dalawang seksyon ng mga daluyan ng dugo (iba't ibang mga sisidlan) sa unang 1-2 oras ng pagtaas ng temperatura ng katawan (hindi sa tuktok ng temperatura!) At bago ang simula ng therapy;
sa kaso ng subacute o sluggish course, 3 sample ang kinokolekta sa unang araw na may pagitan ng 15 minuto o higit pa. Kung ang lahat ng mga sample ay negatibo, 3 pa ang kinokolekta sa ikalawang araw pagkatapos ng paghahasik;
sa mga pasyente na may endocarditis na tumatanggap ng antibiotics, 2 magkahiwalay na sample ang kinokolekta sa bawat isa sa tatlong araw na may positibong klinikal na dinamika ng therapy;
upang kumpirmahin ang klinikal na diagnosis ng "infective endocarditis", kung imposibleng makuha ang kinakailangang bilang ng mga sample ng dugo mula sa pasyente para sa microbiological analysis o kung ang mga resulta ng kultura ay negatibo, ang mga sample ng dugo ay ipinapadala upang pag-aralan ang mga immunological na kadahilanan ng depensa ng katawan sistema (anti-infective resistance system - SAIR); ang paghahatid sa laboratoryo ay isinasagawa sa sterile glass o disposable test tubes na may takip (stopper), na natanggap noong araw bago sa laboratoryo;
kung ang pasyente ay naghihirap mula sa congenital heart disease (CHD), dapat tandaan na ang CHD ay ang prodrome ng infective endocarditis, at ang algorithm ng pagsusuri para sa naturang pasyente ay kinabibilangan ng pagpapasiya ng immunological factor ng CAIR.
6.1.3. Sa mga pasyente na may kasamang antibiotic ang therapy, 6 na sample ang kinokolekta sa loob ng 48 oras; kailangang kolektahin kaagad ang mga sample bago ibigay (kumuha) ang susunod na dosis ng gamot.
6.1.4. Kung ang isang pasyente ay may lagnat na hindi kilalang pinanggalingan, sa una ay 2 sample ang kinokolekta mula sa iba't ibang mga daluyan ng dugo (dalawang seksyon ng daluyan), pagkatapos pagkatapos ng 24-36 na oras, 2 pang mga sample ang nakolekta laban sa background ng pagtaas ng temperatura ng katawan (hindi sa tuktok ng temperatura!).
6.1.5. Pamamaraan para sa pagkuha ng sample ng dugo. Ang mga sample ng dugo para sa kultura ay kinokolekta ng 2 tao sa tabi ng kama ng pasyente o sa silid ng paggamot.
Upang makakuha ng sample, dapat mong gawin ang mga sumusunod:
disimpektahin ang lugar ng balat sa itaas ng sisidlan na pinili para sa pagbutas: gamutin ang balat ng isang pamunas na binasa ng 70% ethyl alcohol, pagkatapos ay gamit ang isa pang pamunas na binasa ng 1-2% na solusyon sa yodo o iba pang disinfectant na inaprubahan para magamit para sa mga layuning ito sa ang inireseta na paraan, sa isang pabilog na paggalaw, simula sa gitna, para sa 30 s;
maghintay hanggang matuyo ang ginagamot na lugar. Hindi pinapayagan na palpate ang sisidlan pagkatapos gamutin ang balat bago ipasok ang karayom;
kapag nagtatrabaho sa mga vial na may dual media: gumamit ng sterile syringe upang mangolekta ng 10 ml ng dugo mula sa mga matatanda, 5 ml mula sa mga bata; buksan ang bote sa ibabaw ng apoy ng isang lampara ng alkohol; magdagdag ng dugo sa vial mula sa isang hiringgilya, pagkatapos alisin ang karayom; sunugin ang leeg at takip ng bote sa apoy ng lampara ng alkohol, isara ang bote gamit ang takip; Maingat, upang hindi ibabad ang takip ng bote, paghaluin ang mga nilalaman nito sa isang pabilog na paggalaw.
Kapag gumagamit ng mga yari na bote na may media at mga reagents na neutralisahin ang mga antibiotic at sumisira sa mga selula ng dugo, o wala ang mga ito, na inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan, 10-30 ml ng dugo ay nakuha mula sa mga matatanda, 0.5-ml mula sa mga bata.. 3.0 ml.
kung saan:
Kasabay ng pagdidisimpekta ng lugar ng balat para sa pagbubutas, ang mga takip ng bote ay ginagamot ng 70% ethyl alcohol (ang solusyon sa yodo ay hindi pinapayagan na gamitin sa paggamot sa mga takip kapag nagtatrabaho sa mga bote, halimbawa, Bactec, Vital at iba pang katulad na mga , naaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pagkakasunud-sunod);
dugo na natanggap mula sa mga may sapat na gulang sa pantay na dami, pagkatapos ng pagbutas sa takip ng lalagyan, ay ipinakilala sa "aerobic" at "anaerobic" na mga lalagyan; dugo na natanggap mula sa mga bata - sa isang espesyal na bote ng "sanggol", na tumusok sa takip ng lalagyan.
6.1.6. Pagkatapos ng venipuncture at blood culture sa isang lalagyan na may medium para maiwasan ang posibleng pangangati (burn), ang natitirang iodine ay aalisin sa balat ng pasyente gamit ang isang pamunas na binasa ng 70% ethyl alcohol.
6.2. Mga pagsusuri para sa mga nakakahawa at nagpapasiklab na proseso ng central nervous system (CNS)
6.2.1. alak. 4.0-5.5 ml ng cerebrospinal fluid na nakuha sa lumbar puncture mula sa subarachnoid space sa pagitan ng vertebrae L3-L4, L4-L5 o L5-S1, pati na rin sa panahon ng pagbutas ng lateral ventricles ng utak, ay ipinadala sa microbiological laboratory para sa pananaliksik.
Ang pagkolekta ng sample ay isinasagawa sa pamamagitan ng dahan-dahang pagpuno ng tatlong tubo na may tatlong bahagi ng materyal para sa pananaliksik sa mga laboratoryo. Gumamit ng mga sterile tube na may masikip na mga takip (disposable na may takip o salamin na may sterile na rubber stopper).
Sa tatlong mga tubo na may materyal na nakuha sa panahon ng lumbar puncture, ang tubo na may pinakamalabok na nilalaman ay palaging ipinapadala, bilang panuntunan, ito ang pangalawang tubo sa proseso ng pagkolekta ng sample.
Kapag nakuha ang materyal sa pamamagitan ng pagbutas ng mga lateral ventricles ng utak, ang sariwang kinuha na cerebrospinal fluid mula sa syringe, na dati nang tinanggal ang karayom, ay ipinakilala sa isang sterile test tube sa apoy ng isang lampara ng alkohol, ang leeg ng tubo at ang Ang stopper ay sinusunog sa apoy ng alcohol lamp (kapag nagtatrabaho sa isang glass test tube na selyadong may cotton-gauze o rubber stoppers), at saradong test tube na may stopper.
Sa lahat ng mga kaso na pinaghihinalaang meningitis, bilang karagdagan sa cerebrospinal fluid, ang materyal ay kinokolekta mula sa pinaghihinalaang foci ng impeksiyon: mga pamunas mula sa nasopharynx, gitnang tainga, mga sample ng dugo, at kasama ang cerebrospinal fluid na ipinadala sila sa laboratoryo. Ang isang mabuting paraan upang mapanatili ang meningococcus sa loob ng mahabang panahon (hanggang 48 oras) ay kunin ang materyal na may pahid na may swab probe at ilagay ito sa isang test tube na may transport medium na mayroon o walang activated carbon.
Ang alak para sa microbiological research ay agad na ipinadala sa laboratoryo sa isang heating pad upang mapanatili ang temperatura na 35-37 °C. Kung hindi ito posible, ang alak ay kinokolekta sa isang lalagyan na may daluyan ng transportasyon at iniwan sa refrigerator (sa temperatura na 4-8 ° C) hanggang sa umaga, at pagkatapos ay inihatid sa laboratoryo.
Kung kinakailangan upang magsagawa ng virological na pag-aaral, ang mga sample ng cerebrospinal fluid ay inilalagay sa isang refrigerator sa temperatura na 2-8 ° C o nagyelo, o nakaimbak sa temperatura ng silid gamit ang mga lalagyan na may espesyal na daluyan ng likido.
6.2.2. Materyal mula sa mga abscess ng utak. Isinasaalang-alang na sa 90% ng mga kaso ang anaerobes ay lumalaki sa sample, ang materyal ay hinahangad mula sa pagsiklab at ipinadala sa laboratoryo sa isang lalagyan na may isang anaerobic na kapaligiran, na naaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan, o sa hiringgilya kung saan nakolekta ang sample, na dati nang tinanggal ang karayom at isinara ang hiringgilya gamit ang isang sterile rubber stopper.
Ang sample ay ihahatid kaagad pagkatapos matanggap.
6.2.3. Materyal na biopsy. Ang mga sample ay nakuha sa panahon ng operasyon at inilagay sa isang lalagyan na may anaerobic na kapaligiran o sa isang sterile tube na may thioglycollate medium, sarado na may sterile rubber stopper.
Ang materyal ay ipinadala kaagad sa laboratoryo.
6.3. Mga pagsusuri para sa mga nakakahawa at nagpapasiklab na proseso ng mga mata
Karamihan sa mga sample na nakuha mula sa mata ay kinokolekta ng isang ophthalmologist. Ang mga sample na ito ay dapat i-culture sa culture media sa bedside ng pasyente o sa treatment room, o sa opisina ng doktor sa panahon ng appointment, at ang inoculated material ay dapat ilipat sa laboratoryo para sa cultivation, isolation, identification at determination ng antibiotic sensitivity ng pathogens. . Ang mga sample na kinuha gamit ang invasive at iba pang mga agresibong pamamaraan ay kinokolekta nang kahanay sa isang conjunctival smear, na sa mga ganitong kaso ay nagsisilbing kontrol.
Ang araw bago, 6-8 na oras (gabi), lahat ng mga gamot at pamamaraan ay kinansela.
Kung mayroong mga tiyak na klinikal na pagpapakita ng isang nakakahawang proseso ng pamamaga o ang doktor ay may mga hinala, bago ang kawalan ng pakiramdam ay kinakailangan upang maghanda ng mga smears upang matukoy ang chlamydia at mga virus, at ipadala ang mga gamot sa laboratoryo. Upang mapanatili ang chlamydia at mga virus, ang materyal ay kinokolekta sa mga lalagyan na may transport media.
Ang discharge ay nakolekta gamit ang isang sterile glass rod o isang sterile swab probe: hadhad sa dalawa o tatlong paggalaw kasama ang mauhog lamad ng mas mababang transitional fold, mula sa gilid ng mga eyelids; para sa isang ulser - mula sa kornea (pagkatapos ng anesthesia), para sa "angular conjunctivitis" - mula sa mga sulok ng eyelids.
Ang pagtatago mula sa lacrimal sac ay kinokolekta gamit ang isang sterile swab probe pagkatapos ng banayad na masahe.
Ang materyal na kinuha gamit ang isang stick at/o swab probe ay inilalagay sa isang lalagyan na may transport medium o sa isang sterile glass tube na may likidong medium at inihatid sa laboratoryo, nag-iingat na huwag ibabad ang cellulose o cotton-gauze stopper ng tubo.
Kapag gumagamit ng swab probes, mas mainam na gumamit ng mga disposable container na may transport medium o sterile glass tubes na may cotton-gauze stoppers na puno ng sterile medium.
Ang pinakatumpak na impormasyon tungkol sa causative agent ng nagpapasiklab na proseso ay maaaring makuha mula sa microbiological analysis ng scrapings.
6.3.1. Conjunctivitis at blepharoconjunctivitis. Ang araw bago, 6-8 oras (gabi), lahat ng mga gamot at pamamaraan ay kinansela para sa mga pasyente sa ospital.
Kinokolekta ang mga sample ng conjunctival gamit ang isang sterile, pre-moistened viscose o calcium alginate swab probe na matatagpuan sa isang disposable sterile tube o glass tube. Ang mga sample mula sa bawat mata ay kinokolekta na may hiwalay na pamunas gamit ang dalawa o tatlong pabilog na paggalaw sa kahabaan ng mucous membrane.
Ang mga tubo na may mga pamunas mula sa bawat mata ay may label na "kanan" at "kaliwa", ayon sa pagkakabanggit, at kaagad ipinadala sa laboratoryo.
Bago kumuha ng scraping, 1-2 patak ng anesthetic ang ibinibigay, halimbawa, proparacaine hydrochloride o iba pang available at inaprubahan para gamitin para sa mga layuning ito sa inireseta na paraan.
Gamit ang dalawa o tatlong maikling matalim na paggalaw sa isang direksyon, ang mga scrapings mula sa conjunctiva ay kinokolekta gamit ang isang espesyal na sterile spatula. Sa panahon ng pagmamanipula, ang mata ay dapat na bukas.
Mag-ingat na huwag hawakan ang iyong mga pilikmata kapag kumukuha ng sample.
Maghanda ng hindi bababa sa 2 pahid mula sa bawat mata sa pamamagitan ng paglalagay ng materyal sa isang malinis, walang grasa na glass slide sa isang pabilog na paggalaw sa ibabaw ng 1 cm diameter na lugar.
Ayusin ang mga pahid sa loob ng 5 minuto sa 95% methyl alcohol sa isang espesyal, mahigpit na saradong lalagyan.
Kaagad Ang mga test tube na may swab probes at mga baso na may smears ay inililipat sa laboratoryo.
6.3.2. Bacterial keratitis. Ang araw bago, 6-8 oras (gabi), lahat ng mga gamot at pamamaraan ay kinansela para sa mga pasyente sa ospital.
Makatanggap ng 2 sample mula sa conjunctiva, gaya ng inilarawan sa talata 6.3.1, dahil ang mga resulta ng kanilang kultura ay maaaring maging kapaki-pakinabang sa pagtukoy sa pinagmumulan ng kontaminasyon ng corneal (isang sample ang ginagamit kung pinaghihinalaang impeksiyon ng fungal).
Kung pinaghihinalaan ang isang impeksyon sa viral, ang conjunctival exudate at ang materyal na nakuha sa pamamagitan ng pag-scrape ay inilalagay sa isang espesyal na daluyan ng transportasyon para sa mga virus.
Isinasagawa ang anesthesia gaya ng ipinahiwatig sa talata 6.3.1.
Mangolekta ng 3-5 scrapings gamit ang paraang inilarawan sa talata 6.3.1.
Ilagay ang nakolektang materyal sa isang maliit (5 ml) sterile disposable screw cap tube o sterile glass tube na may rubber stopper na puno ng medium.
Maghanda ng 2-3 smears sa isang glass slide, at pagkatapos matuyo, ayusin ang mga ito tulad ng inilarawan sa talata 6.3.1.
Kaagad ilipat ang lahat ng materyal sa laboratoryo.
6.3.3. Bakterya endophthalmitis. Ang isang sample ng vitreous fluid (1-2 ml) ay kinokolekta sa pamamagitan ng fine needle aspiration at isang vitrectomy sample ay nakuha.
Susunod na gawin ang sumusunod:
Mula sa hiringgilya, pagkatapos alisin ang karayom, ang mga nilalaman ay inilalagay sa isang disposable sterile na lalagyan na may takip ng tornilyo o isang test tube na mahigpit na sarado na may goma na stopper;
ang sample ng materyal ay maaaring iwan sa hiringgilya sa pamamagitan ng pag-alis ng hangin at pag-alis ng karayom, pagsasara ng hiringgilya gamit ang isang sterile rubber stopper;
mangolekta ng sample mula sa conjunctiva gaya ng inilarawan sa talata 6.3.1;
lahat ng materyal kaagad ipinadala sa laboratoryo.
6.3.4. Preseptal cellulitis. Tratuhin ang balat ng 70% ethyl alcohol at 1-2% iodine solution o iodoform o iba pang available na disinfectant na inaprubahan para gamitin sa inireseta na paraan.
Kung walang bukas na sugat, ang itaas o ibabang talukap ng mata ay tinutusok upang mangolekta ng materyal.
Kung mayroong isang bukas na sugat, mangolekta ng isang sample ng purulent na materyal na may isang hiringgilya at karayom.
Maghanda ng mga pahid sa isang glass slide gaya ng inilarawan sa talata 6.3.1.
Ilipat ang nakolektang materyal sa isang lalagyan ng transportasyon na may media para sa anaerobes o iwanan ito sa isang hiringgilya, na, pagkatapos alisin ang hangin mula dito at alisin ang karayom, ay sarado na may takip.
Nakolektang materyal at smears kaagad ipinadala sa laboratoryo.
6.3.5. Orbital cellulitis. Kolektahin ang aspirate mula sa zone ayon sa pamamaraang inilarawan sa itaas sa talata 6.3.2.
Mangolekta ng sample mula sa conjunctiva at maghanda ng mga pahid sa isang glass slide, tulad ng sa talata 6.3.1.
Para sa paghahatid sa laboratoryo, gamitin ang mga materyales na inilarawan sa sugnay 6.3.3.
Kinokolekta ang mga sample ng dugo mula sa pasyente ayon sa paraang inilarawan sa talata 6.1. Ang mga sample ng dugo at lahat ng nakolektang materyal ay ipinapadala sa laboratoryo.
6.3.6. Pamamaga ng lacrimal gland (dacryoadenitis).
Kolektahin ang purulent na nilalaman gamit ang isang probe-tampon, tulad ng sa talata 6.3.1.
Huwag gamitin ang paraan ng aspirasyon ng karayom, upang hindi makagambala sa integridad ng lacrimal gland.
Ang swab probe at mga slide na may smears ay ipinadala sa laboratoryo.
6.3.7. Pamamaga ng lacrimal sac (dacryocystitis). Kumuha ng sample mula sa conjunctiva, tulad ng sa talata 6.3.1.
Masahe at pindutin ang lacrimal sac para makakuha ng sample ng exudate para sa kultura at paghahanda ng smears o, gamit ang ibang paraan, kolektahin ang exudate gamit ang syringe at needle.
Ilagay ang nakolektang exudate sample sa mga transport container gaya ng inilarawan kanina at dalhin ito sa laboratoryo.
6.3.8. Canaliculitis. Pindutin ang loob ng talukap ng mata upang maglabas ng nana.
Susunod, ang gawain ay isinasagawa ayon sa mga pamamaraan na nakabalangkas sa mas maaga sa seksyong ito.
Kung mayroong isang espesyal na departamento (klinika) sa isang organisasyong panggagamot-at-prophylactic, ang lahat ng kultura ay isinasagawa sa gilid ng kama ng pasyente gamit ang nutrient media na nakuha sa laboratoryo. Ang inoculated material kasama ang mga inihandang smears ay inililipat sa laboratoryo.
6.4. Mga pagsusuri para sa mga nakakahawa at nagpapasiklab na proseso ng tainga
6.4.1. Kung ang panlabas na tainga ay apektado, ang balat ay ginagamot ng 70% na alkohol, na sinusundan ng pagbabanlaw ng sterile saline. Ang discharge mula sa sugat ay kinokolekta sa isang sterile disposable probe-tampon ng isang tubeser o test tube na may medium ng transportasyon, o sa isang tampon na naka-mount sa isang sterile glass tube, sarado na may stopper, mayroon o walang espesyal na medium. Ang pamunas ay inilalagay sa isang tubo at inihatid sa laboratoryo.
6.4.2. Kung ang gitna at panloob na tainga ay apektado, ang mga punctates at iba pang materyal na nakuha sa panahon ng operasyon ay kinokolekta. Ang mga bagay ay inihahatid sa laboratoryo sa isang saradong syringe na ang hangin ay naalis na dati. Mga sample ng tissue - sa isang transport container na may medium para sa anaerobes, na inaprubahan para sa paggamit para sa mga layuning ito sa Russian Federation alinsunod sa itinatag na pamamaraan, o sa isang sterile disposable container na may screw cap. Posibleng gumamit ng sterile glass tube na sarado na may sterile rubber stopper.
6.4.3. Ang tympanocentesis ng tympanic membrane ay ginagawa para sa microbiological diagnosis ng mga impeksyon sa gitnang tainga lamang sa mga kaso kung saan ang pasyente ay hindi tumugon sa nakaraang therapy o sa torpid course ng catarrhal otitis media, kahit na sa visual na kawalan ng exudate sa nakausli na dugo (nasopharyngeal cultures ay positibo sa mas mababa sa 90% ng mga kaso).
Upang makakuha ng sample, linisin ang panlabas na kanal gamit ang isang pamunas na binasa ng 70% ethyl alcohol, na sinusundan ng paggamot na may sterile saline.
Gamit ang isang syringe, mangolekta ng likido mula sa tympanic cavity. Ang sample ay inihahatid sa laboratoryo sa isang sterile disposable na lalagyan na may takip ng tornilyo o sa isang saradong hiringgilya na may dating naalis na hangin.
Kung nasira ang eardrum, ang materyal ay kinokolekta gamit ang isang swab probe gamit ang salamin. Ang pamunas ay inilalagay sa isang sterile disposable tube (tubser) o lalagyan na may daluyan ng transportasyon (maaaring gamitin ang sterile glass tube na mayroon o walang medium), at sa form na ito ay inihatid sa laboratoryo.
6.5. Mga pagsusuri para sa mga nakakahawa at nagpapasiklab na proseso ng respiratory tract
6.5.1. Itaas na respiratory tract. Kung ang isang pasyente ay pinaghihinalaang may diphtheria, whooping cough, chlamydia, mycoplasmosis, legionellosis, o gonorrhea, ipinapaalam sa mga manggagawa sa laboratoryo bago ihatid ang sample upang maging handa silang suriin ang ganitong uri ng materyal.
6.5.1.1. Ang isang sample mula sa mauhog lamad ng mga nauunang seksyon ng lukab ng ilong ay kinokolekta gamit ang isang sterile swab probe na naka-mount sa isang sterile disposable tube (tubeser) o espesyal na naka-mount sa isang sterile glass tube:
alisin ang tampon mula sa test tube, ipasok ito sa kanang butas ng ilong at, gamit ang mga paikot na paggalaw, mangolekta ng materyal mula sa mga pakpak ng ilong at sa itaas na sulok ng pagbubukas ng ilong;
ulitin ang pagmamanipula para sa kaliwang butas ng ilong;
Ang pamunas ay inilalagay sa isang test tube at inihatid sa laboratoryo.
Ang mga sample na nakuha sa ganitong paraan ay kapaki-pakinabang para sa pagtukoy ng karwahe ng Staphylococcus aureus sa mga medikal na manggagawa, ang pagkakaroon ng mga pathogen ng mga impeksyon sa nosocomial, pati na rin para sa pagkilala sa mga dysbiotic disorder ng mauhog lamad ng upper respiratory tract sa panahon ng isang komprehensibong klinikal na immunomicrobiological na pagsusuri ng mga pasyente. isinasagawa sa siyentipiko at praktikal na mga laboratoryo.
Kung mayroong foci ng pamamaga o ulceration sa lukab ng ilong, ang materyal mula sa (mga) sugat ay kinokolekta gamit ang isang hiwalay na pamunas.
6.5.1.2. Nasopharyngeal aspirates ay kinokolekta upang matukoy ang karwahe ng streptococcus pyogenes, meningococcus, diphtheria at pertussis pathogens, pati na rin para sa epidemiological na pag-aaral ng antimicrobial resistance ng S. pneumoniae at H. influenzae:
sipsipin ang materyal mula sa nasopharynx;
ilipat ang materyal sa isang sterile disposable container na may screw cap o isang espesyal na sterile tube na may gas-permeable cellulose o cotton-gauze stopper, na mag-ingat na huwag ibabad ito ng sample ng klinikal na materyal.
6.5.1.3. Nasopharyngeal swab. Ang materyal ay kinokolekta upang matukoy ang karwahe ng meningococcus at masuri ang whooping cough.
Gamit ang banayad na pag-ikot ng mga paggalaw sa ibabang bahagi ng ilong, isang cotton, viscose o calcium alginate probe-tampon ay ipinapasok sa nasopharynx nang salit-salit sa magkabilang butas ng ilong. Kasabay nito, ang mga pakpak ng ilong ay pinindot laban sa tampon at sa ilong septum para sa mas malapit na pakikipag-ugnay sa mauhog lamad.
Ang pamunas ay inilalagay sa isang sterile tube at inihatid sa laboratoryo.
6.5.1.4. Ang paghuhugas ng ilong ay ginagamit upang matukoy ang pagkakaroon ng hindi lamang isang bacterial, kundi pati na rin ang nakararami na isang impeksyon sa viral.
Ang pasyente ay binabalaan na huwag lumunok sa panahon ng pamamaraan.
Ilagay ang ulo ng pasyente sa isang up-and-down na posisyon sa isang anggulo ng humigit-kumulang 70 °, mag-iniksyon ng 5 ml ng sterile saline sa bawat butas ng ilong, ang pasyente ay dapat manatili sa posisyon na ito para sa 3-5 segundo.
Upang mangolekta ng materyal, ibaba ang ulo ng pasyente pasulong upang payagan ang likido na dumaloy mula sa mga butas ng ilong patungo sa isang sterile na disposable na lalagyan, o i-aspirate ang likido sa pamamagitan ng pagpasok ng rubber drain sa bawat butas ng ilong.
Maglagay ng pantay na dami ng hugasan sa isang lalagyan na naglalaman ng viral transport medium o ihatid ang bahaging ito sa isang sterile disposable container.
6.5.1.5. Sinus punctate. Gamit ang isang syringe aspiration technique, ang isang espesyal na sinanay, karanasang manggagamot o otolaryngologist ay nakakakuha ng materyal mula sa maxillary frontal o iba pang sinuses. Ang mga nilalaman ng syringe ay inilalagay sa isang lalagyan na may daluyan ng transportasyon para sa anaerobes o sa isang sterile tube na may daluyan ng thioglycollate. Maaari mong iwanan ang materyal sa hiringgilya at, isara ito ng isang sterile rubber stopper, ihatid ito sa laboratoryo.
6.5.1.6. Pagkuha ng sample mula sa mucous membrane ng pharynx (pharynx).
Hindi pinapayagan na mangolekta ng materyal mula sa pharynx (pharynx) na may isang inflamed epiglottis, dahil ang pamamaraan ay maaaring humantong sa malubhang respiratory obstruction.
Kapag kumukuha ng sample mula sa mauhog lamad ng pharynx (pharynx), huwag hawakan ang mauhog lamad ng pisngi, dila, gilagid, labi na may pamunas, at huwag mangolekta ng laway, dahil ang materyal na ito ay nagpapakilala sa mauhog na lamad ng bibig. cavity, iyon ay, ang itaas na bahagi ng gastrointestinal tract.
Ang pamunas mula sa lalamunan (pharynx) ay kinokolekta sa walang laman na tiyan o 3-4 na oras pagkatapos kumain. Bago kumuha ng sample, dapat banlawan ng pasyente ang kanyang bibig ng mainit na pinakuluang tubig.
Para makakuha ng sample, gumamit ng sterile spatula o swab: alisin ang viscose swab mula sa sterile disposable test tube (tube) o gumamit ng swab na inihanda sa laboratoryo, na naka-mount sa sterile glass test tube. Mas mainam ang paggamit ng swab probe na may viscose head, dahil Ang viscose ay sumisipsip ng mas kaunting likido at mas maraming cellular na materyal.
Sa isang kamay, pindutin ang dila ng pasyente gamit ang isang sterile spatula.
Sa kabilang banda, kinokolekta nila ang materyal, halili na ginagamot ang kanang tonsil, ang kanang palatine arch, ang kaliwang tonsil, ang kaliwang palatine arch, at ang uvula na may tampon; sa antas ng uvula, hinawakan nila ang posterior wall ng ang pharynx na may tampon.
Ang mga sample na nakuha sa ganitong paraan ay kapaki-pakinabang para sa pagtukoy ng pagkakaroon ng isang pathogen ng nosocomial infection, pati na rin para sa pagkilala sa mga dysbiotic disorder ng mauhog lamad ng upper respiratory tract sa panahon ng isang komprehensibong klinikal at immunomicrobiological na pagsusuri ng mga pasyente na isinasagawa sa siyentipiko at praktikal na mga laboratoryo .
Kung may mga foci ng pamamaga o ulceration sa mauhog lamad, lalo na mag-ingat kapag kumukuha ng sample at mangolekta ng karagdagang materyal mula sa (mga) sugat na may hiwalay na pamunas.
Ilagay ang pamunas sa isang sterile disposable o glass tube at ihatid ito sa laboratoryo.
6.5.1.7. Kung pinaghihinalaan ang dipterya, ipinapaalam sa mga manggagawa sa laboratoryo, na nagpapahiwatig ng diagnosis sa direksyon.
Sa mga kaso ng isang proseso ng respiratory pathological, ang materyal ay sabay-sabay na kinokolekta mula sa mauhog lamad ng nasopharynx at pharynx ayon sa mga pamamaraan na ipinakita nang mas maaga.
Kung ang isang cutaneous form ng diphtheria ay pinaghihinalaang, ang materyal ay kinokolekta mula sa balat, pati na rin mula sa mauhog lamad ng pharynx (pharynx) at nasopharynx, at ang lahat ng mga sample ay inihatid sa laboratoryo.
6.5.2. Mas mababang respiratory tract. Ang microbiological diagnosis ng mga nagpapaalab na proseso sa mas mababang respiratory tract ay nagpapakita ng malubhang kahirapan, dahil Sa panahon ng proseso ng pagkolekta, ang sample ay maaaring kontaminado ng mga mikroorganismo na sumasakop sa itaas na respiratory tract. Ang ecological niche na ito ay lubos na kontaminado ng mga oportunistikong microbes, lalo na sa pagkakaroon ng dysbacteriosis (qualitative - species composition at/o quantitative - concentration ng species na nasa CFU/ml sa isang weakened at/o immunocompromised contingent ng mga subject).
Para sa kadahilanang ito, ang mga sample ng materyal mula sa lower respiratory tract ay kinokolekta nang may partikular na pangangalaga upang makakuha ng tamang impormasyon tungkol sa (mga) etiological agent. Kapag gumagamit ng mga invasive na pamamaraan upang mangolekta ng sample (kung hindi ito nangyari sa panahon ng operasyon), ang mga instrumento na ginamit ay dumadaan sa itaas na respiratory tract, at may tunay na posibilidad na magtanim ng mas malalim na loci na may mga microorganism na naninirahan sa upper respiratory tract.
6.5.2.1. plema.
Freely expectorated plema- mas gusto ang koleksyon sa umaga.
Bago kolektahin ang sample, ang pasyente, kung maaari, ay dapat magsipilyo ng kanyang mga ngipin at banlawan ang kanyang bibig at lalamunan ng mainit na pinakuluang tubig; kung ang pasyente ay hindi maaaring gawin ito sa kanyang sarili, pagkatapos ay ang banyo ng kanyang oral cavity ay isinasagawa ng mga medikal na manggagawa .
Ang pasyente ay binabalaan na huwag mag-ipon ng laway o nasopharyngeal discharge sa lalagyan.
Ang isang sample ng plema na nakuha bilang isang resulta ng isang malalim na ubo ay kinokolekta sa isang espesyal na sterile disposable na lalagyan na may takip ng tornilyo o sa isang espesyal na inihanda na sterile glass jar.
Ang sample ng plema ay ipinadala sa laboratoryo.
Induced sputum (pangunahin na inirerekomenda kung ang Mycobacterium tuberculosis at Pneumocystis yiroveci ay pinaghihinalaang)- mas gusto ang koleksyon sa umaga.
Bago kolektahin ang sample, ang pasyente, kung maaari, ay dapat magsipilyo ng kanyang ngipin at banlawan ang kanyang bibig at lalamunan ng mainit na pinakuluang tubig; kung ang pasyente ay hindi maaaring gawin ito sa kanyang sarili, pagkatapos ay ang banyo ng kanyang oral cavity ay isinasagawa ng mga medikal na tauhan.
Bago ang pamamaraan, basain ang isang malinis na sipilyo ng mainit na pinakuluang tubig at i-brush ito sa mga mucous membrane ng magkabilang pisngi, dila at gilagid.
Aktibong banlawan ang bibig ng pasyente ng mainit na pinakuluang tubig.
Gamit ang isang inhaler, payagan ang pasyente na lunukin ang 20-30 ml ng 3-10% sterile saline solution.
Kolektahin ang induced sputum sa isang espesyal na sterile disposable container na may screw cap o sa isang sterile glass jar na inihanda nang naaayon.
Ang sample ay ipinadala sa laboratoryo.
Kasabay ng sample ng plema, ang isang sample mula sa pharynx (lalamunan) ay dapat ipadala sa laboratoryo, kolektahin pagkatapos ng pag-ikot sa oral cavity at kaagad bago mangolekta ng plema, malayang pinaghiwalay (expectorated) o sapilitan.
6.5.2.2. Tracheostomy at endotracheal aspirates. Ang tracheostomy ay kolonisado ng mga microorganism sa loob ng 24 na oras pagkatapos ng intubation ng pasyente, bilang isang resulta kung saan ang mga resulta ng kultural na pag-aaral ay may mababang klinikal na kahalagahan. Dahil sa itaas, ang mga resulta ng kultura na nakuha sa mga intubated na pasyente ay dapat na patuloy na ihambing sa data ng klinikal (halimbawa, lagnat o ang hitsura ng mga infiltrate sa x-ray).
Ang mga sample ng bronchial lavage o bronchoalveolar lavage ay kinokolekta, kung maaari, bago makuha ang mga sample ng scraping o biopsy. Ang panuntunan ay idinidikta ng pangangailangan na maiwasan ang labis na dugo sa nagresultang likido, dahil maaaring baguhin ng dugo ang konsentrasyon ng cellular at non-cellular na bahagi ng sample at makakaapekto sa resulta ng microbiological analysis.
Ang aspirate sample ay kinokolekta sa isang sterile disposable container na may screw cap, o sa isang sterile glass container na naaangkop na naka-mount, o sa sterile disposable glass tube na may stopper, o inihatid sa laboratoryo sa isang closed syringe na ang hangin ay inalis.
6.5.2.3. Mga sample na nakuha gamit ang isang bronchoskop. Bronchoalveolar lavage (sample ng pagpipilian), bronchial lavage (mababang sensitivity para sa pag-diagnose ng pneumonia), bronchial scraping (mas makabuluhan kaysa sa lavage), ang mga sample ng transtracheal biopsy ay nakukuha sa pamamagitan ng paglalagay ng bronchoscope transnasally o transorally sa isang non-intubated na pasyente o sa pamamagitan ng endotracheal tube sa isang intubated na pasyente.
Upang makakuha ng sample ng bronchial lavage o bronchoalveolar lavage:
sterile non-bacteriostatic (opisyal) physiological solusyon ay injected na may isang hiringgilya sa pamamagitan ng biopsy channel ng bronchoscope sa magkahiwalay na bahagi (kabuuang dami mula 5-20 hanggang 100 ml);
Bago ipasok ang susunod na bahagi ng saline solution, maingat na i-aspirate ang ipinasok na bahagi ng syringe sa isang sterile disposable container na may screw cap o sa isang sterile na disposable o glass tube na may stopper, o iwanan ito sa isang saradong syringe, na naalis na ang dati. hangin mula dito (karaniwang 50-70% ng injected na solusyon sa asin ay nasa lavage);
bawat sinipsip na bahagi ay kinokolekta sa isang hiwalay na lalagyan;
Sa pagtatapos ng pamamaraan, ang mga sample na nakuha mula sa parehong lugar ay pinagsama. Ang mga sample mula sa iba't ibang lugar (hal., ang kanang itaas na umbok ng baga at ang kanang ibabang umbok) ay dapat pagsama-samahin lamang pagkatapos kumonsulta sa manggagamot;
sa direksyon ay nagpapahiwatig ng kabuuang dami ng injected na solusyon sa asin.
Upang makakuha ng sample ng bronchial scraping:
isang teleskopiko na double catheter na may distal na dulo na ginagamot ng polyethylene glycol (o iba pang naaangkop na reagent) ay ipinasok sa pamamagitan ng biopsy channel ng bronchoscope upang maiwasan ang kontaminasyon ng sample;
kolektahin ang materyal sa isang sterile disposable container na may screw cap o sa isang transport container na may anaerobic medium o sa sterile tube na may thioglycollate medium na mahigpit na sarado gamit ang sterile rubber stopper;
ihatid ang materyal sa laboratoryo.
Upang makakuha ng transbronchial biopsy, ang isang sample ay kinokolekta sa pamamagitan ng biopsy channel ng bronchoscope at, inilalagay ito sa isang sterile disposable container na may screw cap na may maliit na halaga (1-2 ml) ng non-bacteriostatic (opisyal) na solusyon sa asin o sa isang test tube na may thioglycollate medium, mahigpit na sarado na may rubber stopper, ay inilipat sa mga laboratoryo
6.5.2.4. Mga sample ng lung aspirate. Upang mangolekta ng sample, ang isang karayom ay ipinasok sa pamamagitan ng sternum sa lung infiltrate sa ilalim ng kontrol ng isang computed tomography scanner. Ang materyal ay aspirated mula sa site ng pamamaga. Kung mayroong isang malaking infiltrate o ilan sa mga ito, ito ay kinakailangan upang makakuha ng ilang mga sample mula sa kaukulang mga sugat o ilang mga sample mula sa isang malaking lesyon. Ang materyal ay inililipat sa laboratoryo sa isang transport container na may anaerobic medium o sa isang glass tube na may thioglycollate medium, o sa isang screw-on disposable container.
6.5.2.5. Mga sample ng biopsy sa baga. Kung maaari, kumuha ng mga piraso ng tissue na 1-3 cm ang laki. Kung malaki ang sugat o marami sa kanila, maraming sample ang kinokolekta. Ilagay ang sample sa isang sterile disposable container na may screw cap o sa isang transport container na may medium para sa anaerobes, o sa isang container (test tube) na may thioglycollate medium na sarado na may sterile rubber stopper.
6.6. Mga pagsusuri para sa mga nakakahawang at nagpapasiklab na proseso ng genitourinary system
6.6.1. Mga sample ng ihi.
6.6.1.1. Pangkalahatang tuntunin para sa koleksyon ng sample:
Hindi pinapayagan ang pagkolekta ng ihi mula sa bed linen o mula sa isang bag ng ihi;
upang pag-aralan ang ihi sa panahon ng natural na pag-ihi, gamitin ang karaniwang bahagi ng umaga;
bago kolektahin ang sample, kinakailangan na lubusan na banlawan ang panlabas na genitalia at anal area na may mainit na pinakuluang tubig; Sa kasong ito, ang espesyal na pansin ay dapat bayaran sa paggamot ng pagbubukas ng urethra sa mga lalaki (ang vestibule ng puki sa mga kababaihan) upang matiyak na sa panahon ng pamamaraan ang sample ay hindi karagdagang kontaminado ng microbes;
Hindi pinapayagan na gumamit ng mga disinfectant para sa pagproseso, dahil kapag ipinakilala sa isang sample, maaari nilang pigilan ang paglaki ng mga mikroorganismo;
ang sample ay inilipat sa laboratoryo nang hindi lalampas sa 2 oras mula sa sandali ng koleksyon;
Upang mangolekta at maghatid ng mga sample sa laboratoryo, gumamit ng mga sterile disposable container na may screw cap o test tubes (posibleng gumamit ng sterile na espesyal na naka-mount na glass tube na may gas-permeable cellulose o cotton-gauze stopper, ngunit ang espesyal na atensyon ay binabayaran sa hindi pagbababad sa takip);
Ang paghahatid sa laboratoryo ng mga sample ng aspirate na nakuha gamit ang pamamaraan ng suprapubic puncture ng pantog ay isinasagawa sa isang lalagyan ng transportasyon na may isang espesyal na daluyan para sa anaerobes o sa isang saradong syringe na walang karayom;
kung pinaghihinalaan ang isang impeksyon sa viral, ang mga sample ay inihahatid sa laboratoryo sa isang sterile disposable container na inilagay sa tinunaw na yelo (hindi pinapayagan ang tuyong yelo!);
ang anumang pamamaraan para sa pagkuha ng sample gamit ang isang catheter (lalo na sa mga kababaihan) ay isinasagawa nang may maingat na pagsunod sa mga patakaran ng asepsis upang maiwasan ang karagdagang kontaminasyon ng pasyente sa panahon ng pagpasok ng catheter;
Para sa microbiological research, hindi pinapayagang gumamit ng sample mula sa pang-araw-araw na sample.
6.6.1.2. Pagkolekta ng sample ng ihi mula sa mga kababaihan sa panahon ng natural na pag-ihi.
Gumamit ng katamtamang bahagi, dahil... ang unang daanan ng ihi ay dapat mag-alis ng anumang mga commensal na maaaring naroroon sa urethra. Ang sample na nakolekta sa mga sumusunod na sipi ay dapat na walang kontaminasyon. Ang pagiging maaasahan ng mga positibong resulta mula sa naturang materyal ay 80% kapag nangongolekta ng isang sample, 90% kapag nangongolekta ng dalawang magkasunod na sample, at 100% kapag nangongolekta ng tatlong sample kung ang lahat ng sample ay nagbibigay ng parehong mga resulta.
Ang manggagawang medikal na kumukuha ng sample ay dapat maghugas ng kanilang mga kamay gamit ang sabon, banlawan ng tubig, at patuyuin. Kung ang sample ay nakolekta ng pasyente mismo, ipinaliwanag sa kanya nang detalyado kung paano ito ginagawa, isinasaalang-alang ang paghahanda na nakabalangkas sa itaas, at binigyan ng babala tungkol sa kung ano ang maaaring mangyari kung nilabag niya ang mga patakaran:
dapat mong lubusan na banlawan ang pagbubukas ng urethra at ang lugar ng vestibule ng puki, pati na rin ang perineum at anus na may tubig na may sabon o likidong sabon, banlawan ng mainit na pinakuluang tubig, at tuyo ng isang sterile na tela ng gauze;
ang pagbubukas ng puki ay dapat sarado na may sterile cotton swab;
panatilihin ang panlabas na labia sa layo mula sa bawat isa sa panahon ng pag-ihi;
alisan ng tubig ang isang maliit na halaga ng ihi sa isang espesyal na lalagyan para sa pagtatapon, habang patuloy na umiihi;
Mangolekta ng katamtamang dami ng ihi (10-20 ml) sa isang espesyal na disposable container na may screw cap o isang sterile glass container na espesyal na naka-install sa laboratoryo.
6.6.1.3. Pagkolekta ng sample ng ihi mula sa mga lalaki sa panahon ng natural na pag-ihi.
Sa mga lalaki, ang isang bahagi ng ihi ay kinakailangan para sa microbiological na pagsusuri, dahil ang kanilang posibilidad ng kontaminasyon ay makabuluhang mas mababa kaysa sa mga kababaihan.
Ang taong kumukuha ng sample ay dapat maghugas ng kamay gamit ang sabon, banlawan ng tubig, at patuyuin. Kung ang mga sample ay kinokolekta ng pasyente mismo, dapat silang ipaliwanag nang detalyado kung paano ito ginagawa, isinasaalang-alang ang paghahanda na nakabalangkas sa ibaba, at binigyan ng babala kung ano ang maaaring mangyari kung ang mga patakaran ay hindi sinusunod:
[email protected], aalamin natin ito.
Ang pagpili ng klinikal na materyal ay isinasagawa ng mga medikal na tauhan bilang pagsunod sa mga patakaran ng rehimeng anti-epidemya, sa pamamagitan lamang ng mga sterile na disposable na instrumento (mga syringe, naaangkop na probes, cytobrushes, atbp.), Nakasuot ng disposable gloves.
Kolektahin ang materyal mula sa napiling locus nang ganap hangga't maaari, gamit ang angkop na mga applicator - probes, cytobrushes (tiyakin ang kasapatan ng klinikal na sample).
Panatilihin ang nakuhang materyal (DNA/RNA ng mga microorganism) gamit ang maaasahang transport media at mga preservative na ibinigay ng PCR laboratory. Tinitiyak ng daluyan para sa transportasyon at pag-iimbak ng mga klinikal na materyal ang katatagan ng RNA at DNA sa temperatura ng silid hanggang sa 28 araw.
Ilagay ang nakolektang materyal sa mga vacuette na may EDTA (dugo), sa mga disposable chemically pure Eppendorf tubes (smears, cerebrospinal fluid, biopsy, atbp.). Ang pangunahing kondisyon kapag nangongolekta ng materyal ay upang maiwasan ang mga DNAases at ribonucleases na makapasok sa sample, dahil Ang Ribonucleases at DNAases ay mga enzyme para sa pagkasira ng RNA at DNA. Ang mga ito ay lubos na matatag sa kapaligiran at makatiis ng matagal na pagkulo. Ang pangunahing pinagmumulan ng mga nucleases ay ang mga particle ng balat at alikabok. Ang mga plastik na tubo at mga tip ay dapat na may label na "DNase, RNase-free."
Kaagad pagkatapos ng koleksyon, mahigpit na isara ang mga tubo at bote na may klinikal na materyal nang hindi hinahawakan ang kanilang panloob na ibabaw o ang panloob na ibabaw ng mga takip.
Kapag nagtatrabaho sa klinikal na materyal, kapag binubuksan ang mga test tube, vial, huwag gumawa ng biglaang paggalaw at maiwasan ang pag-splash at splashing, na maaaring humantong sa kontaminasyon ng mga sample at gumaganang ibabaw.
Upang maiwasan ang magkaparehong kontaminasyon, mag-imbak at magdala ng mga sample sa isang hiwalay na plastic bag o rack. Kung kinakailangan ang paglipat ng sample, gumamit ng mga awtomatikong micropipettes na may mga napapalitang disposable tip na may mga aerosol barrier.
Bago dalhin sa laboratoryo ng PCR, ang napiling biomaterial ay dapat na nakaimbak sa temperatura na 2–4 °C nang hindi hihigit sa 48 oras. Kinakailangang bawasan ang oras mula sa pagkolekta ng sample hanggang sa pagsusuri ng PCR. Ang transportasyon ng mga sample ay isinasagawa sa mga cooler bag, thermal container, thermoses na may thermal bag, yelo o tuyong yelo.
Dugo, plasma, suwero
Inirerekomenda na mangolekta ng dugo gamit ang mga sistema ng vacuum. Ang pagpapakilala ng naturang mga sistema ay ginagawang posible na i-standardize ang mga manipulasyon sa dugo, ay may positibong epekto sa lahat ng mga yugto ng pananaliksik sa laboratoryo at, sa pangkalahatan, inililipat ang gawain ng laboratoryo sa ibang, mas mataas na antas ng kalidad. Ang kanilang paggamit ay ginagarantiyahan ang proteksyon ng mga tauhan mula sa impeksyon, binabawasan ang oras na ginugol sa pag-sample ng dugo, ay mas maliit na malamang na sinamahan ng hemolysis, at pinapayagan ang mga sample ng dugo na panatilihing sterile at transported hermetically.
Inirerekomenda na magsagawa ng venipuncture sa isang walang laman na tiyan mula sa ulnar vein papunta sa isang espesyal na vacuum tube na may isang anticoagulant, pagkatapos kung saan ang tubo ay baligtad para sa paghahalo ng maraming beses. Ang mga tubo na may dugo ay iniimbak sa refrigerator sa +4 °C – +8 °C. Ang maximum na shelf life ng dugo ay 1 araw (huwag mag-freeze!). Kung kinakailangan ang pangmatagalang imbakan, kinakailangang kumuha ng 1 ml ng serum o plasma ng dugo at iimbak ito sa temperatura na -16 o -20 o C nang hindi hihigit sa 2 linggo.
Mga katangian ng mga vacuum system na ginagamit para sa PCR diagnostics:
Mga vacuette na may EDTA (6%) - ginagamit para sa qualitative at quantitative na pananaliksik. Ang EDTA anticoagulant ay maayos na nag-aayos ng mga cell nucleic acid.
Mga vacuette na may sodium citrate (3.8%) - ginagamit para sa qualitative at quantitative na pananaliksik. Hindi angkop para sa pangmatagalang transportasyon, dahil Ang citrate ay isang magandang nutrient medium para sa dayuhang microflora.
Mga vacuette na walang anticoagulants (blood serum) - ginagamit para sa qualitative research. Ang paggamit ng serum ng dugo para sa dami ng pag-aaral ay hindi kanais-nais, dahil bahagi ng nakakahawang ahente ay naninirahan sa namuong dugo, sa gayon binabawasan ang posibilidad na matukoy ang dami ng nilalaman nito sa dugo.
Ang mga vacuette na may heparin ay ganap na hindi angkop para sa mga reaksyon ng PCR. Ang Heparin ay isang polyanion, tulad ng DNA, at samakatuwid ay nakikipagkumpitensya sa DNA sa reaksyon ng PCR.