Lynelle R. Johnson DVM, PhD, Dip ACVIM (Internal Medicine)
University of California, USA
Основные положения
Чаще всего коллапс трахеи наблюдается у собак мелких пород среднего возраста с избыточным весом тела. Иногда эта патология встречается и у молодых крупных собак.
Коллапс трахеи чаще всего происходит в дорзо-вентральном направлении. Ему предшествует ослабление и истончение хрящевых колец трахеи, вследствие чего наблюдается пролапс задней стенки трахеи в ее просвет.
Коллапс шейного отдела трахеи чаще всего происходит на вдохе, а коллапс грудного отдела трахеи — на выдохе.
Лучший способ диагностики - визуальное обследование дыхательных путей. С помощью бронхоскопии можно получить образцы воздуха из глубоких отделов дыхательных путей.
Коллапс трахеи является следствием необратимой патологии хрящевых колец трахеи. Лечение включает в себя поддержание хорошего состояния верхних и нижних дыхательных путей.
Собакам с одышкой и тяжелым кашлем, связанным с коллапсом шейного отдела трахеи, показано хирургическое вмешательство и протезирование участка трахеи с поврежденными хрящевыми кольцами.
Введение
Коллапс трахеи достаточно часто встречается в ветеринарной практике. Он является причиной кашля и обструкции дыхательных путей у собак мелких пород. Иногда эта патология встречается и у молодых собак крупных пород. Хотя причины развития коллапса трахеи до конца не известны, полагают, что данная патология является следствием врожденных отклонений, в частности, генетического нарушения хондрогенеза. Часто коллапс трахеи развивается вследствие хронических заболеваний дыхательных путей, дегенерации хряща, травмы и недостаточности иннервации трахейной мышцы (musculus trachealis dorsatis). Чаше всего коллапс трахеи развивается в дорзовентральном направлении с пролапсом слабой дорзальной трахеальной мембраны в просвет трахеи.
Распознать коллапс трахеи в клинических условиях достаточно просто. Выявление степени затруднения дыхания у животного, факторов, способствующих усилению кашля, и раннее вмешательство помогают подобрать пациенту соответствующее лечение, что улучшает исход заболевания и снижает вероятность возникновения тяжелых осложнений.
Физиoлoгия и патофизиoлoгия
Стенки трахеи укреплены 30-45 кольцами из гиалинового хряща. Концы хрящевых образований скреплены с дорзальной стороны трахеи с формированием полного кольца (Рисунок 1). Трахеальные кольца связаны друг с другом кольцевыми связками. Изнутри трахея выстлана псевдостратифицированным, реснитчатым и столбчатым эпителием. В верхнем отделе дыхательных путей в слое эпителия встречаются клетки Гоблета, продуцирующие слизь, выстилающую эпителий. Эта слизь и реснитчатый аппарат эпителиоцитов являются частью механизма защиты легких от повреждений.
Трахея является уникальной структурой: в ее шейном отделе внутреннее давление атмосферное, тогда как в грудном отделе - отрицательное (соответствующее давлению в плевральной полости) (Рисунок 2а). На вдохе грудная клетка расширяется, а диафрагма смещается в сторону брюшной полости. В результате объем плевральной полости увеличивается, а давление в ней падает (Рисунок 26). Волна пониженного давления передается по дыхательным путям, в результате этого воздух поступает в легкие. При выдохе давление в плевральной полости возрастает, и градиент давления заставляет воздух выходить наружу из дыхательных путей. У здоровых животных трахейные хрящевые кольца полностью предупреждают значительные изменения диаметра трахеи в ходе фаз дыхательного цикла.
У собак с коллапсом трахеи хрящевые кольца утрачивают свою упругость и утрачивают способность предупреждать изменения диаметра трахеи при дыхании из-за колебания давления. У некоторых собак мелких пород с коллапсом трахеи выявляются недостаточное количество хондроцитов, снижение содержания хондроитинсульфата и кальция в хряще дыхательных путей. Полагают, что недостаток гликопротеинов и глюкозаминогликанов вызывает существенное снижение количества связанной воды в хрящевой ткани, усыхание и истончение хряща. Патологические изменения, выявляемые в хряще дыхательных путей у собак с коллапсом трахеи, могут быть связаны как с нарушением хондрогенеза, так и с дегенерацией гиалинового хряща. Причиной же недостаточного количества хондроцитов могут быть и генетические факторы, и отклонения в питании.
У больных собак коллапсы трахеи происходят в различных отделах трахеи в зависимости от фазы дыхательного цикла (Рисунок 2, б и в). Ослабленные хрящевые кольца в шейном отделе трахеи теряют способность выдерживать отрицательное давление на вдохе, из-за чего и происходит спадение трахеи (коллапс) в дорзо-вентральном направлении. При повторных или постоянных коллапсах хрящевые кольца деформируются, растягивая при этом дорзальную стенку трахеи. Эта стенка прогибается в просвет, раздражает противоположную стенку, вызывая повреждение и воспаление трахеального эпителия. Из-за воспаления усиливается секреция слизи, увеличивается количество клеток, продуцирующих мукоидную слизь. Количество слизисто-гнойного секрета может быть столь велико, что образуется пленка, подобная той, что формируется при дифтерии. Все это вызывает у пациента кашель, нарушает работу реснитчатого аппарата дыхательных путей и существенно увеличивает риск их инфицирования.
Рисунок 1.
Эндоскопическая картина нормальной трахеи. Заметны С-образные хрящевые кольца, концы которых соединены дорзальной трахеальной мембраной (на этой фотографии - вверху). Через дыхательный эпителий просвечивают кровеносные сосуды.
У многих больных собак коллапсы захватывают не только шейный, но и грудной отдел трахеи, главные бронхи и даже мелкие дыхательные пути. При интенсивных выдохах иди при кашле в плевральной полости возникает положительное давление, передаваемое на дыхательные пути. Поэтому коллапсы грудных отделов дыхательных путей обычно происходят на выдохе (Рисунок 2, в). Неизвестно, понижается ли количество хондроцитов в хрящевых кольцах грудного отдела трахеи у собак с трахеальными коллапсами. Иногда у собак встречаются и генерализованные коллапсы всего грудного отдела дыхательных путей.
Анамнез и симптоматика заболевания
Чаще всего коллапс трахеи возникает у собак мелких и карликовых пород: чихуа хуа. померанских шпицев, той-пуделей, йоркширских терьеров, мальтийских болонок и мопсов. Возраст собак, у которых впервые проявляются признаки заболевания, варьирует от 1 года до 15 лет. Тем не менее, чаще всего болезнь проявляется во взрослом возрасте. Половой предрасположенности к заболеванию не выявлено. Редко наблюдается коллапс трахеи и у молодых собак крупных пород (например, золотистых ретриверов или лабрадор-ретриверов).
У большинства собак с коллапсом трахеи в течение длительного времени наблюдаются приступы тяжелого кашля. В целом владельцы животных описывают этот кашель как "сухой", "гулкий", постепенно нарастающий. Часто владельцы указывают на то, что приступы кашля у собаки начинаются после еды или питья. В результате этою некоторых собак начинает тошнить, животные могут подавиться кормом, может возникнуть лаже рвота. В некоторых случаях подобные приступы кашля развиваются столь остро, что у владельцев возникает положение, что собаке в трахею попало инородное тело. Кашель постепенно становится пароксизмальным и сопровождается вторичным повреждением дыхательных путей. Развивается одышка, увеличивается частота дыхания, снижается физическая выносливость. При повышении нагрузки на дыхательную систему (например, вследствие физической нагрузки, повышенной температуры или влажности окружающей среды) наблюдаются признаки дыхательной недостаточности. Часто после интратрахеальной интубации тяжесть клинической симптоматики увеличивается. Обострение симптоматики может вызвать также физическая нагрузка или резкий рывок ошейника. Владельцы животных, опасаясь ухудшения состояния своих питомцев, нередко ограничивают их физическую активность. В результате этого, многие собаки набирают избыточный вес, и у них существенно снижается выносливость к физической нагрузке. По наблюдениям автора, именно у собак с избыточным весом особенно высока нагрузка на дыхательную систему. У животных, страдающих ожирением, тяжесть клинической симптоматики коллапса трахеи (особенно кашель) бывает очень ярко выражена. Тем не менее, по данным литературы, среди собак, подвергавшихся хирургическому вмешательству в связи с коллапсом трахеи, только у 9% наблюдалось сильное ожирение (4).
При наличии коллапса шейного отдела трахеи у собак наблюдается одышка на вдохе. Животное сильно пыхтит, с трудом втягивая воздух. При аускультации выявляется стридор и другие крупнопузырчатые хрипы в дыхательных путях. Такая аускультативная симптоматика характерна для коллапса шейного отдела трахеи и сопутствующего паралича гортани. При развитии отека мешочков гортани может появиться симптоматика обструкции верхних дыхательных путей. Она проявляется в виде преходящего "вывертывающего" кашля и высокого давления на вдохе.
Рисунок 2а. Отделы трахеи и давление, которое действует на отдельные участки дыхательных путей: шейный отдел трахеи подвергается воздействию атмосферного давления, а грудной - плеврального.
Рисунок 26. На вдохе диафрагма расширяется и смещается назад. В результате давление в плевральной полости становится отрицательным. Волна отрицательного давления передается по дыхательным путям и заставляет атмосферный воздух входить в легкие. У собак с трахеальным коллапсом трахея теряет упругость и способность противостоять перепадам давления. В результате при вдохе она спадает в дорзо-вентральном направлении.
Рисунок 2в. При форсированном выдохе или при кашле плевральное давление становится положительным. Это обеспечивает открытие дыхательных путей в грудной клетке. Однако, если хрящевые кольца недостаточно жесткие, происходит коллапс.
Когда у собаки развивается хронический бронхит, отягощенный коллапсами шейного или грудного отделов трахеи, кашель становится жестким, приобретает постоянный характер и сопровождается выделением мокроты. Изредка у собак с коллапсами шейного или грудного отделов трахеи наблюдается преходящая гипоксемия, приводящая к обморокам. Часто такие обмороки происходят во время приступов кашля. Однако у некоторых собак обмороки бывают вторичными вследствие развития легочной гипертензии и гипоксии.
Клиническое обследование
Собаки с коллапсами трахеи в состоянии покоя внешне кажутся здоровыми. Даже во время приступов кашля их состояние не вызывает тревоги. Любую собаку с признаками системных заболеваний следует обследовать на наличие патологий, вызывающих приступы кашля (сердечная недостаточность, пневмония, новообразования вдыхательных путях). Тщательное общеклиническое обследование позволит уточнить причину кашля и выявить сопутствующие заболевания.
Рисунок 3.
Рентгенограмма дыхательных путей йоркширского терьера в возрасте 10 лет на вдохе. У собаки в течение 2 месяцев наблюдались приступы кашля, одышка, цианоз. На полученной в латеральной проекции рентгенограмме виден коллапс шейного отдела трахеи, распространяющийся вплоть до входа трахеи в грудную клетку. Грудной отдел аорты слабо расширен. Рентгенограмма любезно предоставлена д-ром Anne Babr)
Обследование дыхательной системы следует начинать с тщательной аускультации и осторожной пальпации трахеи и гортани. Наличие пальпируемых мешочков гортани указывает на нарушение функции этого органа. Поданным некоторых исследователей подобная дисфункция развивается у 20-30% собак с коллапсами трахеи (5, 6). Турбулизация потока воздуха в суженном участке трахеи приводит к генерированию характерных звуков, слышимых при аускультации трахеи. У некоторых собак с коллапсами трахеи трахея чрезвычайно чувствительна, поэтому для предупреждения стимуляции приступа при обследовании следует соблюдать максимальную осторожность. При пальпации трахеи в ряде случаев коллапса удается выявить избыточную податливость или мягкость ее хрящевых колец.
У собак с неосложненным коллапсом крупных дыхательных путей дыхательные звуки в легких часто не изменены. Однако проводить аускультативное обследование в подобных случаях из-за одышки, учащенного дыхания и ожирения (вследствие этого дыхательные шумы оказываются приглушенными) бывает непросто. Кроме того, сильные шумы в верхних дыхательных путях заглушают слабые бронхоальвеолярные звуки. Патологические шумы в легких (хрипы и свисты) часто позволяют диагностировать характер патологии. Хрипы в легких обычно указывают на прохождение воздуха через заполненные жидкостью альвеолы или перекрытые слизью дыхательные пути. Мягкие хрипы на вдохе могут быть признаком отека легких; более жесткие и громкие хрипы характерны для собак с пневмонией и пневмофиброзом. Свисты - более продолжительные звуки, обычно прослушиваются на выдохе. Они характерны для животных с хроническим бронхитом. Характерным признаком поражения мелких дыхательных путей является также напряжение брюшного пресса на выдохе.
У собак мелких пород нередко имеет место недостаточность сердечных клапанов. В результате этого из-за шумов в сердце бывает особенно сложно проводить аускультационную диагностику причин кашля. Обычно при застойной сердечной недостаточности наблюдается тахикардия. При заболеваниях дыхательных путей частота сердечных сокращений обычно сохраняется, однако развивается выраженная синусовая аритмия. При нагрузках на дыхательную систему и у таких животных может появиться тахикардия, что существенно затрудняет диагностику. Особенно сложно диагностировать заболевание у мелких собак, страдающих застойной сердечной недостаточностью и патологиями трахеи и бронхов. В таких случаях показано рентгенологическое обследование.
Диагностика
Хотя диагноз коллапса трахеи может быть поставлен на основании данных анамнеза и клинической симптоматики, для определения сопутствующих заболеваний и назначения индивидуального лечения необходимо провести общеклиническое обследование больного животного. Для диагностики сопутствующих заболеваний рекомендуется сделать полный анализ крови, включающий определение количества клеток и биохимических показателей сыворотки, и анализ мочи.
Визуализирующие методы
Для уточнения диагноза коллапса трахеи и выявления сопутствующих заболеваний легких и сердца показано применение рентгенографии. Обычно получают рентгенограммы в стандартных проекциях, но лучше - рентгенограммы в вентродорзальной проекции при вдохе и выдохе. На рентгенограммах, полученных на полном вдохе, хорошо заметен коллапс в шейном отделе трахеи. Грудной участок трахеи при этом может быть расширен (Рисунок 3, 4а). Коллапсы главных бронхов, грудного отдела трахеи или в комбинации, обычно заметны на рентгенограммах, полученных на полном выдохе. Шейная часть трахеи при этом раздута (Рисунок 46).
Точность диагностики возрастает, если во время рентгенографического обследования провоцируется приступ кашля. К сожалению, правильно интерпретировать динамику дыхательных путей по статическим рентгенограммам сложно. Согласно данным некоторых исследований, по рентгенограммам удается выявить коллапс трахеи в лишь 60-84% случаев (4, 5). Часто рентгенографическая визуализация трахеи затрудняется из-за наложения изображений пищевода или шейных мышц. В таких случаях при рентгенографическом обследовании эффективным оказывается применение нестандартной проекции, снизу вверх. Эта проекция позволяет выявить спавшие участки в шейном отделе трахеи, хотя правильно направить пучок рентгеновского излучения бывает сложно. При массовых флуороскопических обследованиях в питомниках для собак удается выявить случаи преходящих коллапсов дыхательных путей. Этим же методом можно выявить фазу дыхательного цикла, при которой развиваются коллапсы.
Рисунки 4. Рентгенограммы дыхательных путей пуделя в возрасте 13 лет, длительное время страдающего приступами кашля.
4а. Рентгенограмма, полученная на вдохе. Шейный и грудной отделы трахеи свободны. Свободны также главные бронхи, хотя диаметр левого бронха несколько меньше.
46. Рентгенограмма на выдохе. Хорошо заметен коллапс грудного отдела трахеи. Коллапс захватывает также главные бронхи и дыхательные пути дистальнее грудины.
Недавно для диагностики коллапса трахеи стали использовать ультразвуковое исследование (7). При расположении источника ультразвука на шее удается обследовать диаметр просвета шейного отдела трахеи и документировать динамику его изменения во время дыхательного цикла. В случаях, когда невозможно сделать флуороскопию, назначается именно ультразвуковое исследование как наиболее подходящий метод диагностики коллапсов трахеи. К сожалению, ультразвуковое обследование обычно эффективно только при коллапсах шейного отдела трахеи. Кроме того, оно не позволяет диагностировать сопутствующие воспалительные процессы и инфицирование нижних отделов дыхательных путей.
У собак мелких пород из-за особенностей телосложения или ожирения бывает сложно выявить отклонения в тканях легких и сердца рентгенографически. Например, у собак с избыточным весом жировые отложения в грудной клетке и в медиастспии могут дать ложное представление об инфильтратах и легких. Накопления жира в перикарде и ограниченная подвижность легких, связанная с ожирением, могут ввести в заблуждение по поводу наличия кардиомегалии. Таким образом, нужно осторожно интерпретировать изменения интерстициальной плотности и размеров сердца у собак с коллапсами трахеи. При наличии у животного шумов в сердце особое внимание следует уделить обследованию контура сердца - возможна гипертрофия левого предсердия из-за ею сдавливания левым бронхом. По вентролорзальным рентгенограммам можно не только исследовать состояние сердца и легких собаки, но и оценить степень ее ожирения. Владельцу собаки следует обязательно указать на толстую жировую прослойку, покрывающую грудную клетку. Это поможет убедить его в необходимости снижения веса животного.
Получение образцов из дыхательных путей
Для получения образцов из дыхательных путей применяется либо промывка (лаважирование) трахеи, либо бронхоскопия. Обе эти процедуры требуют анестезии. Однако проводить их очень полезно, так как это позволяет получить образцы жидкости из нижних отделов дыхательного тракта для цитологического или бактериологическою исследования. С помощью данных методов можно диагностировать инфицирование дыхательных путей и оценить вклад воспалительных реакций в наблюдающуюся клиническую симптоматику. Перед проведением лаважирования или бронхоскопии необходимо тщательное обследование верхних отделов дыхательных путей. Обструкция верхних дыхательных путей может усилить симптоматику, связанную с трахеальным коллапсом. При обследовании верхних дыхательных путей особое внимание следует обратить на состояние функции гортани, длину мягкого неба и отсутствие отечности мешочков гортани.
Для проведения лаважирования трахеи удобнее всею использовать трансоральный подход (см. Протокол 1). При таком подходе меньше риск повреждения хрящевых колец трахеи и слизистой. Для облегчения интубации лучше применить общую анестезию или сильные селативные препараты. Для минимизации раздражения слизистой нужно использовать тонкие стерильные интратрахеальные зонды. При проведении зонда в трахею нужно следить за тем, чтобы не загрязнить получаемые образцы бактериальной микрофлорой и клетками слизистой верхних отделов дыхательных путей. Использовать манжетку зонда при этой процедуре не требуется. Полученные образцы лаважа следует обязательно отправить на бактериологическое культивирование для выявления аэробных бактерий. Можно также сделать посевы на инфицирование микоплазмой.
Интерпретация результатов бактериологических тестов существенно облегчается после цитологического обследования лаважа. Например, у здоровых собак глотка не стерильна, из-за чего при бактериологическом обследовании в посевах лаважа можно выявить рост бактерий (8) (Таблица 1). При выявлении в лаваже чешуйчатых клеток ротовой полости и бактерий Simonsiella в ходе гистологического обследования можно ожидать рост этих бактерий и микоплазм и в бактериологических посевах. При бактериологическом культивировании лаважа собак с коллапсами трахеи обычно выявляются много бактерий разных видов (Таблица 1). Тем не менее, роль бактериального инфицирования в развитии клинической симптоматики данного заболевании до сих пор не ясна.
Результаты бактериологического исследования микрофлоры здоровых собак и собак с коллапсами трахеи
Степени тяжести коллапса трахеи
| Степень I | Хрящевые кольца трахеи сохраняют кольцевую структуру почти в норме. Имеется слабый прогиб дорзальной трахеальной мембраны в просвет трахеи, снижающий диаметр этого просвета не более, чем на 25%. |
| Степень II | Хрящевые кольца сплющиваются. Из-за прогиба растянувшейся дорзальной трахеальной мембраны диаметр просвета трахеи снижается примерно на 50%. |
| Степень III | Хрящевые кольца очень сильно сплющены. Мышцы трахеальной мембраны касаются внутренней части колец.Диаметр просвета трахеи снижен на 75%. |
| Степень IV | Мышцы трахеальной мембраны полностью перекрывают просвет трахеи. В тяжелых случаях просвет трахеи становится двойным. |
Для получения образцов микрофлоры, заселяющей нижние отделы дыхательных путей, лучше применить бронхоскопию. С помощью бронхоскопа можно получить образцы без риска их обсеменения бактериями из верхних дыхательных путей. Кроме того, с помощью бронхоскопии можно подтвердить диагноз коллапса трахеи в тех случаях, когда данные рентгенографии и флуороскопии не позволяют сделать твердого заключения. Бронхоскопия дает возможность прямо оценить место расположения и степень ослабления поврежденных хрящевых колеи трахеи или бронхов (Таблица 2). которые характеризуют тяжесть коллапса трахеи, что особенно важно при подготовке к хирургическому вмешательству. Бронхоскопия позволяет также исследовать динамику и характер повреждений, выявить участки воспаления и раздражения слизистых, подтвердить или опровергнуть диагноз коллапса грудного отдела трахеи. Таким образом, бронхоскопия - один из самых эффективных методов оценки роли заболевания дыхательных путей в развитии легочной недостаточности.
Протокол получения трахеального лаважа у собак
— Дать собаке кислородную маску для преоксигенации.
— Ввести седативный препарат для проведения обследования структуры и функции верхних дыхательных путей. Понаблюдать за функционированием гортани во время дыхания. В норме у собак во время вдоха черпаловидные хрящи отходят в сторону.
— Интубировать животное тонким стерильным эндотрахеальным зондом. В ходе интубации убедитесь, что зонд при прохождении в дыхательные пути не коснулся глотки.
— Через зонд до уровня грудины введите в дыхательные пути тонкий полипропиленовый стерильный катетер (можно применить трубку для парентерального питания). Длина катетера должна быть такая, чтобы можно было достичь уровня 4-го ребра.
— Введите через катетер с помощью шприца 4-6 мл стерильного физиологического раствора. Во время отсасывания введенной жидкости вызовите у собаки кашель или помассируйте ей грудную клетку - это увеличит отсасываемый объем лаважа.
— При необходимости повторите введение и отсасывание физиологического раствора. Необходимо получить 0,5-1 мл лаважа. Лаваж нужно отправить на бактериологическое (в т.ч. на определение присутствия микоплазм) и цитологическое обследование.
— Перед завершением процедуры введите в трахеальный катетер 1 мл 1 % раствора лидокаина. Это ослабит кашлевой рефлекс.
— При необходимости поместите пациента в кислородную камеру.
При подготовке собак к исследованию дыхательных путей их следует обязательно преоксигенировать в течение 5 мин. до начата анестезии. Для анестезии можно применять самые разные способы. Цель анестезии в данном случае - предупредить кашлевой рефлекс и повреждение эндоскопа во время бронхоскопии. При подборе метода анестезии следует ориентироваться на общее состояние здоровья собаки и особенности применяемого анестетика (его побочные эффекты). Поскольку большинство собак с коллапсами трахеи относятся к мелким породам, предпочтительнее использовать брохоскопы диаметром не более 4,5-5 мм. Иногда собака бывает настолько маленькой, что нельзя применять анестезию газообразными анестетиками и невозможно провести бронхоскоп через интратрахеальную трубку. В этом случае при применении анестезии газообразными анестетиками в ходе бронхоскопического обследования трахеи и нижних дыхательных путей собаку следует экстубировать.
Для проведения бронхоскопии собаку следует уложить спиной вверх, а под подбородок подложить небольшую подушку. Для фиксации рта в открытом положении во время проведения процедуры используются 2 больших роторасширителя. В начале с помощью бронхоскопа обследуется гортань и верхние отделы дыхательных путей. После его введения в трахею определяется степень и динамика ее коллапса (Рисунок 5). С помощью меток на оставшейся снаружи части бронхоскопа можно определить и протяженность коллапсировавшего участка трахеи или число хрящевых колец, структура которых нарушена. После введения бронхоскопа в загрудинную часть дыхательных путей обследуются главные бронхи. Здоровые бронхи открыты и имеют круглое или эллиптическое сечение
(Рисунок 6). Диаметр дыхательных путей в ходе дыхания должен меняться незначительно, а количество секретов в них должно быть минимально. У собак с генерализованными коллапсами дыхательных путей форма просветов этих путей вариабельна. Кроме того, у них хорошо заметно замыкание этих просветов даже при нефорсированном дыхании (Рисунок 7).
У всех собак, которым проводится бронхоскопия, следует обязательно забирать бронхоальвеолярный лаваж (БАЛ). Его получают с помошью бронхоскопа и направляют для обследования с целью выявления инфицирования бактериями или микоилазмами, а также - признаков воспаления. На основании результатов бактериологического и гистологического исследования полученного БАЛ можно назначить животному соответствующую антибиотикотерапию и/или противовоспалительное лечение (9). Для получения БАЛ бронхоскоп осторожно вводят в мелкие бронхи и через его биопсийный канал инъектируют 10-20 мл стерильного физиологического раствора. Отсасывание введенной жидкости можно проводить вручную, соблюдая особую осторожность, или с помошью механического отсоса с ловушкой для образцов. Обычно удается отсосать 40-60% объема введенной жидкости. В норме БАЛ содержит около 300 лейкоцитов в I мл, из которых 70-80% приходится на альвеолярные макрофаги, 5-6% - на лимфоциты. 5-6% - на нейтрофилы и 5-6% - на эозинофилы. Признаком воспалительной реакции служит значительное увеличение количества нейтрофилов. Факт инфицирования может быть установлен на основании выявления септических нейтрофилов и по наличию фагоцитированных бактерий в клетках.
Рисунок 5. II-III степени. Для обеспечения поступления кислорода во время бронхоскопии был применен стерильный резиновый катетер. Хрящевые кольца сплющены, в результате дорсальная часть трахеи (под меткой на снимке) растянута.
Снимок любезно предоставлен JeffD. Bay, DVM. MS, университет штата Миссури, Колумбия. США
Бронхоскопия у собак с трахеальными коллапсами - процедура рискованная. Особенно велик риск осложнений у собак с ожирением, отличающихся повышенной чувствительностью трахеи. Для снижения риска возникновения осложнений выводить животное из анестезии следует медленно, обеспечив обогащенную кислородом среду. В дистальный отдел трахеи перед извлечением бронхоскопа можно ввести 1 мл 1% раствора лидокаина. Это ослабит кашлевой рефлекс.
Медикаментозное лечение
Если у собаки выявляется сильная одышка, связанная с обструкцией дыхательных путей, стрессирующее воздействие диагностическою обследования следует сократить до минимума. В таких случаях для выведения животного из опасного состояния нужно поместить его в кислородную камеру и применить мягкие седативпые препараты. Например, подкожное введение бутофанола (0.05-1 мг/кг) и ацепромазина (0,01-0.1 мг/кг) каждые 4-6 часов позволяет не только успокоить собаку, но и остановить у нее приступ кашля. Нужно отметить, что применение этих лекарственных препаратов в комбинации требует некоторой осторожности, поскольку может вызвать резкое снижение артериального давления. В начале применения следует использовать минимальную дозировку лекарственных средств для определения чувствительности к ним данного животного. Если нежелательных последствий не наступает, в дальнейшем при необходимости дозировку можно увеличить. Если у собаки сильное воспаление трахеи или отек гортани, следует ввести ей однократно короткодействующий кортикостероид, обладающий противовоспалительным действием.
Длительная терапия при коллапсах трахеи у собак должна быть направлена на ослабление тех факторов, которые могут спровоцировать усиление клинической симптоматики заболевания. К сожалению, специфических способов лечения нарушения обмена веществ в хрящевой ткани трахеальных колец не существует, поэтому риск обострения заболевания у больной собаки сохраняется на протяжении всей жизни. При выявлении инфицирования дыхательных путей следует назначить антибиотикотерапию. Выбор антибиотиков осуществляется на основания определения чувствительности к ним посеянной микрофлоры пациента. Если выявлено инфицирование микоплазмой, следует применять антибиотики, эффективные против микроорганизмов, лишенных клеточной стенки. Наиболее эффективны в этом случае доксиииклин, хлорамфеникол и энрофлоксацин. Для стерилизации дыхательных путей обычно бывает достаточно 7-10-дневного курса применения антибиотиков, однако при наличии пневмонии длительность антибиотикотсрапии может составить от 3 до 6 недель.
При выраженном трахеите необходимо непродолжительное лечение кортикостероидными препаратами. Обычно пациенту вводят преднизон или преднизолон в дозах 0.5 мг/кг/сутки на протяжении 3-7 дней. При наличии у собаки на фоне коллапсов трахеи хронического бронхита назначают более длительный курс терапии кортикостероидами. Препараты применяются в больших дозировках. После снятия воспаления и устранения инфекции назначаются препараты против кашля. Его подавление необходимо для обрыва цикла повторных повреждений дыхательных путей. Обычно подавление кашля у собак с коллапсами трахеи требует применения наркотических средств. Эффективно подавлять кашель можно с помощью гидроколона (0,22 мг/кг 2-3 раза в день) или буторфанола (0,55-1,1 мг/кг при необходимости), применяемых per os (10). В начале курса дозировка этих препаратов подбирается для каждой собаки индивидуально таким образом, чтобы добиться максимальною подавления кашля норецепторов не относятся к бронхорасширяюшим средствам, однако они вызывают дилятацию мелких дыхательных путей и облегчают воздухообмен в них на выдохе. В результате вероятность коллапса грудных отделов трахеи снижается. Специальные фармакокинетические исследования различных форм теофиллина показали, что два выпускаемых различными фирмами препарата теофиллина пролонгированного действия обеспечивают поддержание достаточно высокой концентрации препарата в крови у собак на протяжении длительного времени. Обычные формы теофиллина также могут быть эффективны, но их эффективность много ниже, чем у упомянутых препаратов пролонгированного действия. При коллапсах трахеи у собак применяются также агонисты р-адренорецепторов: тербуталин (1,25-5 мг/кгр<гол- 2-3 раза вдень) и альбутерол (50 мкг/кг 3 раза в день). Следует помнить, что применение бронхорасширяющих средств любого типа может привести к побочным эффектам, например, повышенной нервозности и возбудимости животных, тахикардии, желудочно-кишечным расстройствам.
Всем собакам с коллапсами трахеи показана диетотерапия. Снижение веса тела, например, существенно снижает нагрузку на дыхательную систему. Для достижения этой цели животных обычно переводят на готовые низкокалорийные рационы, которые обеспечивает поступление в организм примерно 60% энергетических потребностей здоровых собак. Идеальная скорость снижения веса (2-3% веса тела в неделю) позволяет владельцу быстро нормализовать вес собаки. Полезно также постепенно увеличивать физическую нагрузку животного - это облегчает и ускоряет достижение нормального веса тела. Следует отметить, что физическую нагрузку в жаркую и влажную погоду лучше снизить до минимума, а ошейник заменить на шлейку. Это позволит избежать внезапного обострения заболевания.
Хирургическое лечение
При коллапсах шейного отдела трахеи эффективно протезирование пораженных хряшевых колец. Хирургическое вмешательство показано в тех случаях, когда терапевтическое лечение оказывается неэффективным или из-за нарушения дыхания у животных наблюдаются ослабление условных рефлексов и обмороки. Хирургическое вмешательство существенно ослабляет клиническую симптоматику: исчезает кашель, свободнее становится дыхание. В одном исследовании было установлено, что обычно владельцы собак довольны результатом хирургической операции, даже если постоперационный паралич гортани потребовал трахеостомии.
Для собак с обструкцией верхних дыхательных путей необходимо хирургическое устранение причин обструкции. Например, показано, что укорочение мягкого неба и освобождение черпаловидного хряща гортани облегчает клиническую симптоматику при коллапсах трахеи.
Коллапсы трахеи часто встречаются у собак мелких пород и требуют длительного лечения. Больным животным показано снижение веса тела и применение препаратов против кашля. В каждом конкретном случае важно также выявить и устранить сопутствующие заболевания верхних и нижних дыхательных путей, осложняющие течение коллапсов трахеи.
Автор (ы):
С.К. Собакина, П.В. Белокопытов, А.Н. Лапшин, С.Г. Атанасова, А.А. Иванова
Организация(и):
Инновационный ветеринарный центр Московской ветеринарной академии
Журнал:
№5 - 2018
УДК 619:616.24
Ключевые слова: бронхоальвеолярный лаваж, бронхоальвеолы, бронхоскопия. Key words: bronchoalveolar lavage, bronchoalveoli, bronchoscopy/
Сокращения: БАЛ – бронхоальвеолярный лаваж, ПАВ – поверхностно-активное вещество
Цель исследования: описать существующие техники проведения бронхоальвеолярного лаважа
Абстракт
Бронхоальвеолярный лаваж (БАЛ) – это минимально инвазивная техника, используемая в гуманной и ветеринарной медицине для отбора проб из бронхов нижнего порядка и альвеолярных пространств.
Отбор проб БАЛ используется для изучения врожденного, клеточного и гуморального клеточного ответа, обусловленного наличием популяции клеток, которые могут облегчить диагностику различных диффузных заболеваний легких.
Bronchoalveolar lavage (BAL) is a minimally invasive technique utilized in human and veterinary medicine to sample the lower generation bronchi and alveolar spaces.
BAL sampling is used to study the congenital, cellular and humoral cellular response due to the presence of a cell population caused by the presence of a population of cells that can facilitate the diagnosis of various diffuse pulmonary diseases.
Bronchoscopy and BAL can provide definitive diagnoses in cases of inflammatory airway disease, bronchiectasis, eosinophilic pneumonia, pulmonary parasites, bacterial pneumonia, mycotic pneumonia and neoplasia.
Показанием для проведения БАЛ являются кашель, неясные или отсутствие изменений на рентгенограмме легких, несмотря на проявление клинических признаков, соответствующих заболеваниям респираторного тракта, новообразования легких, пневмония, стридор, удаление обструкции бронхиальной слизью.
Противопоказаниями к проведению БАЛ являются одышка (относительное противопоказание) и коагулопатия.
Есть несколько критериев, гарантирующих попадание раствора в нижние дыхательные пути (бронхоальвеолы): процент извлекаемой жидкости и наличие слоя ПАВ.
Более высокий процент извлеченного раствора (около 50%) говорит об отборе проб из нижних дыхательных путей. Медиана извлеченного раствора у собак 42-48%, у кошек 50-75%. В свою очередь, небольшое количество извлеченной жидкости (< 40%) говорит о том, что проба взята из крупных дыхательных путей .
Поверхностно-активное вещество (ПАВ) – это фосфолипиды, белки и ионная смесь, секретируемая пневмоцитами типа II в эпителиальную альвеолярную поверхность для снижения альвеолярного поверхностного натяжения. Поскольку легочное поверхностно-активное вещество в дыхательных путях присутствует только в альвеолярной эпителиальной выстилке, присутствие ПАВ в БАЛ подтверждает, что отбор проб был произведен именно из альвеол. В пробах БАЛ ПАВ проявляется в виде пены (рис. 1).
Рис. 1. Присутствие ПАВ в образце жидкости БАЛ
Цитологический анализ остается основой оценки БАЛ. В норме у здорового животного в БАЛ содержатся макрофаги, лимфоциты, нейтрофилы, эозинофилы и тучные клетки.
Образцы жидкости БАЛ считаются неприемлемыми, если они были загрязнены из других областей дыхательных путей или не представляют собой бронхоальвеолярную среду .
Техника проведения БАЛ
Основная техника БАЛ включает в себя вливание стерильного изотонического раствора в нижние дыхательные пути и аспирацию этого раствора. БАЛ может быть проведен вслепую, путем проведения катетера в легкие через эндотрахеальную трубку, с бронхоскопической ассистенцией или под контролем рентгеноскопии. Бронхоскопически-ассистированный БАЛ позволяет визуализировать нижние дыхательные пути и направлять БАЛ в наиболее пораженные доли легких .
Проведение БАЛ у собак
Заболевание нижних дыхательных путей у собак приводит к структурным изменениям в бронхах (например, утолщение слизистой оболочки, повышенная экссудация) и изменениям в нормальной популяции клеток эпителиальной выстилки .
БАЛ у собак проводится под общей анестезией. Пациентам, проходящим процедуру БАЛ, рекомендуется поддержка оксигенотерапии во время и некоторое время после проведения процедуры, пока сатурация не придет к норме .
Во время проведения «слепого» БАЛ перорально в трахею через стерильную эндотрахеальную трубку вводится стерильный уретральный катетер до тех пор, пока он осторожно не вклинится в дистальный бронх, почувствовав при этом сопротивление. Необходимо проявлять осторожность, чтобы не завести катетер слишком далеко в дыхательные пути и не спровоцировать ятрогенный пневмоторакс, повредив ткань легкого трансбронхиально. После введения от трех до пяти раз вводится 25 мл или 5 мл/кг (по разным данным) теплого (37 С) стерильного изотонического раствора сразу же проводится аспирация(транстрахеальный смыв) и затем проводится 2-3 мануальных вдоха мешком Амбу. После этого остаток жидкости аспирируется самотеком или с помощью аспиратора. Иногда подниманием задней части животного можно увеличить количество извлекаемой жидкости (рис. 2).
Рис. 2. Поднятие задней части тела животного для увеличения количества извлекаемой жидкости
Данный метод БАЛ зачастую обеспечивает лаваж каудальных долей легких (рис. 3) .
Рис. 3. Набор инструментов для проведения БАЛ
Во время бронхоскопического БАЛ бронхоскоп вводится перорально в трахею. До выполнения БАЛ проводится полное бронхоскопическое обследование. Как только участок лаважа идентифицирован, бронхоскоп осторожно вклинивается в субсегментный бронх. Плотное прилегание бронхоскопа к исследуемому бронху обеспечивает максимальное извлечение введенного раствора. Когда достигнуто плотное прилегание к бронху, через биопсийный канал бронхоскопа вводится теплый (37С°) изотонический раствор. Рекомендуется введение теплого изотонического солевого раствора для снижения риска возникновения бронхоспазма. От 1 до 4 раз вводится в общей сумме от 5 до 50 мл раствора (1-2 мл/кг). Проведенные исследования обнаружили, что использование объема в расчете мл/кг веса приводит к большему объему извлеченной жидкости. Введение небольшого количества раствора может быть недостаточным для достижения альвеол. После того, как физиологический раствор был введен в дыхательные пути, происходит немедленная аспирация при помощи шприца или с помощью аспиратора, соединенного последовательно с аспирационным клапаном бронхоскопа или с уретральным катетером через стерильную пробирку для сбора проб. Отсутствие раствора при аспирации может быть из-за коллапса дыхательных путей и следует накладывать меньше усилий на шприц для аспирации. Если отрицательное давление все еще присутствует, бронхоскоп можно быть оттянут на несколько миллиметров, но в этом случае объем полученной жидкости может быть меньше. Рекомендуется отбирать пробы БАЛ из нескольких долей легких даже при диффузном поражении легких. Пациентам с очаговыми поражениями легких (аспирационная пневмония) следует выполнять БАЛ только из пораженной доли легкого. Если получен недостаточный объем раствора или если нет пены, процедуру следует повторить .
Исследования гуманной медицины показало, что бронхоскопически-ассистированный БАЛ обеспечивает образцами более высокого диагностического качества и надежности, чем неконтролируемая техника . Но особенностью и особым вниманием, которое надо проявлять к применению данной техники в ветеринарной медицине, по нашему мнению, является сложность в подготовке инструментального канала к исследованию для исключения контаминации флорой инструментального канала бронхоскопа образцов БАЛ.
Проведение БАЛ у кошек
Рис. 4. Проведение БАЛ кошке
Меньший размер респираторного тракта у кошек делает бронхоскопию трудной. С этим связано большее количество осложнений по сравнению с другими видами животных. Например, в ретроспективном обзоре гибкой бронхоскопии и БАЛ у кошек в ветеринарном центре выявлено 38% осложнений по сравнению с 5% у людей. Большинство (24%) осложнений в этом обзоре считаются умеренными (например, десатурация гемоглобина). Рекомендуется предварительное введение ингаляционных бронходилататоров (сальбутамол, ипратропия бромид) перед БАЛ у кошек. БАЛ у кошек проводится аналогично с БАЛ у собак. Объем вводимого раствора варьируется до 20 мл или 3-5 мл/кг, чаще всего достаточно 2-3 введений (рис. 4) .
Проведенные исследования, сравнивающие 2 метода аспирации: мануальный и при помощи отсоса, показали, что аспирация посредством отсоса дает большее количество аспирируемой жидкости и более качественные образцы, однако это не влияет на окончательные результаты анализа БАЛ .
Рентгеноскопически-ассистированный БАЛ
В ретроспективном исследовании проведен рентгеноскопически-ассистированный БАЛ кошкам. Интубированному пациенту вводился 0,035“ гидрофильный проводник, по которому вводился 8Fr красный резиновый катетер. БАЛ проведен посредством двукратного введения 5 мл стерильного физиологического раствора, который был аспирирован 20 мл шприцом. В результате проведения рентгеноскопически-ассистированного БАЛ только катетеризация краниальной правой доли легких закончилась безуспешно, катетеризация остальных долей легких проведена успешно, результаты цитологического анализа отвечали всем необходимым требованиям. Следовательно, рентгеноскопически-ассистированный БАЛ может являться практичной, надежной и безопасной методикой для отбора проб из всех долей легких, кроме краниальной правой доли (рис. 5, 6) .
Рис. 5. Проведение рентгеноскопически-ассистированного БАЛ собаке
Рис. 6. Визуализация при рентгеноскопии во время проведения БАЛ
Побочные эффекты и осложнения после проведения БАЛ
Незначительные осложнения могут включать кровотечение, стойкую гипоксемию, бронхоспазм и вазовагальный обморок. Основные осложнения включают пневмонию, аритмии, пневмоторакс, пневмомедиастинум, дыхательную недостаточность и остановку сердца .
Всем пациентам после проведения БАЛ необходима дополнительная оксигенация. Если отмечается цианоз или снижение сатурации, необходима дополнительная оксигенация. Если пациенту не достаточно дополнительной оксигенации, следует рассмотреть другие причины, такие как бронхоспазм или пневмоторакс. Также после любой процедуры лаважа может быть временное ухудшение дыхательной функции или кашель .
Сообщается о случаях спонтанного пневмоторакса. Редко, но осложнения после проведения БАЛ могут быть фатальными, такие пациенты либо имели респираторный дистресс-синдром до проведения БАЛ, либо было невозможно восстановить адекватную оксигенацию и вентиляцию после процедуры .
Сообщается о 2% показателе смертности/эвтаназии (2/101). В этом исследовании смертность связана с предшествующим процедуре БАЛ респираторным дистресс-синдромом. Данные находки приводят к выводу, что предшествующая одышка является относительным противопоказанием к проведению БАЛ. Также сообщается о значительном бронхоспазме после проведения БАЛ у собак с эозинофильными заболеваниями дыхательных путей, который купировался при помощи бронходилататоров и оксигенации. В ретроспективном обзоре гибкой бронхоскопиии БАЛ у кошек сообщается о том, что 6% кошек требовалась ночная госпитализация и проведение оксигенотерапии, у 3% развился пневмоторакс и у 6% смертность или эвтаназия были связана с невозможностью восстановления вентиляции после процедуры. Зарегистрировано значительно меньше осложнений у кошек, которые предварительно получили тербуталин 0,01 мг/кг п/к за 12-24 час. перед проведением бронхоскопии и БАЛ (8%) по сравнению с кошками, которые предварительно ничего не получали (40%). Предварительное получение ингаляционных бронходилататоров (сальбутамол, ипратропия бромид) перед БАЛ предупреждает бронхоконстрикцию у аллерген-чувствительных кошек. Таким образом, в настоящее время рекомендуется предварительное получение бронходилататоров перед бронхоскопией у кошек .
Анализ жидкости БАЛ
Для достижения наилучших результатов обработка образцов БАЛ должна выполняться в течение часа после сбора. При оценке цитологии следует оценивать пробы лаважа с каждой доли в отдельности. В одном из исследований 37% собак имели разные результаты, когда оценивали образцы из разных легочных долей.
В каждом образце необходимо подсчитать не менее 200 клеток. Наиболее распространенным типом клеток, выделенным в БАЛ, является альвеолярный макрофаг. Жидкость БАЛ кошек в норме содержит большее количество эозинофилов по сравнению с другими видами .
Большинство собак с бактериальными инфекциями имеют нейтрофильное воспаление. У собак с хроническим бронхитом чаще всего наблюдается смешанное воспалительное или нейтрофильное воспаление. Увеличение количества эозинофилов (от 20% до 450%) наблюдается у собак с эозинофильной бронхопневмонией. Также, смешанное воспаление часто встречается при наличии грибковых инфекций .
Нейтрофильное воспаление с наличием или без внутриклеточных бактерий может наблюдаться у кошек с пневмонией. Кошки с бронхитом или астмой часто имеют повышенное содержание эозинофилов. Однако нейтрофильное и эозинофильное воспаления не являются патогномоничным для инфекционного или иммунологического процесса, поскольку как эозинофильное, так и нейтрофильное воспаления также можно наблюдать при неоплазии.
Достаточно трудно диагностировать неоплазии из образцов, полученных при БАЛ. Все клетки должны быть исследованы по критериям злокачественности. В небольшом исследовании кошки с гистологически диагностированной карциномой показали нейтрофильное воспаление, но никаких признаков рака не было обнаружено в цитологии жидкости, полученной при БАЛ. Другое исследование показало значительное совпадение количества дифференциальных клеток у кошек с пневмонией, бронхитом и неоплазией. По этим причинам подсчет клеток БАЛ следует интерпретировать в сочетании с клиническими признаками и данными рентгенографии и бронхоскопии.
В норме дыхательные пути не являются стерильными, вследствие чего количественный расчет бактериальных клеток может помочь дифференцировать контаминацию от реальной инфекции дыхательных путей. Содержание более чем 1,7 *10 3 колониеобразующих единиц на миллилитр характерно для наличия бактериальной бронхопневмонии. Во всех полученных образцах необходимо проводить анализ на наличие аэробов и микоплазм. Анализ на наличие грибков следует проводить в эндемических районах.
Сообщается об использовании ПЦР в диагностике видов Micoplasma, Bordetella bronchiseptica и Toxoplasma gondii . Результаты ПЦР должны быть интерпретированы с осторожностью в связи с тем, что Mycoplasma и Bartonella в норме могут присутствовать в ротоглотке у собак и кошек. Следовательно, положительные результаты не гарантируют того, что данные патогены вызывают текущие клинические признаки у пациента. К тому же отрицательный результат не исключает наличие инфекции. Несмотря на то, что микроорганизм может присутствовать в дыхательных путях, он может быть не представлен в небольшом образце, используемом для экстракции ДНК, в итоге получая ложно-отрицательный результат .
Таблица 1.
Цитология после проведения БАЛ
.
Рис. 7. Сегментоядерные нейтрофилы и альвеолярные Рис. 8. Реснитчатый респираторный эпителий
макрофаги на фоне слизи
Рис. 9. Сегментоядерные нейтрофилы на фоне Рис. 10. Конгломерат клеток эпителия
эозинофильного
розового межуточного вещества – слизи
Выводы
Диагностическое значение данной процедуры не должно быть переоценено, потому что пациенты с заболеваниями дыхательных путей имеют повышенные риски, связанные с анестезией и респираторными процедурами. Риск проведения процедуры всегда должен быть оценен с точки зрения ожидаемых результатов. Также, как показывают исследования, БАЛ при сопровождении бронхоскопии имеет меньшее количество осложнений и большую диагностическую ценность полученных образцов. Выбор методики также может быть сделан на основании материальной базы ветеринарного учреждения, но в любом случае выполнение БАЛ должно быть регламентировано технически и выполнено подготовленными специалистами.
Литература
1. Carol R. Reinero, DVM, PhD, Diplomate ACVIM (Internal Medicine), University of Missouri–Columbia. Bronchoalveolar Lavage Fluid Collection Using a Blind Technique.
2. Standardization of Bronchoalveolar Lavage Aspiration Techniques to Optimize Diagnostic Yield of Canine Lower Respiratory Tract Samples by Katharine Sarah Woods.
3. Mills PC, Lister AL. Using urea dilution to standardize cellular and non-cellular components of pleural and bronchoalveolar lavage (BAL) fluids in the cat. J. Fel. Med. Surg. 2006; 8:105-110. Mordelet-Dambrine M., Arnoux.
4. Melamies MA, Jarvinen AK, Seppala KM, Rita HJ, Rajamaki MM. Comparison of results for weight-adjusted and fixed-amount bronchoalveolar lavage techniques in healthy Beagles. Am. J. Vet. Res. 72:694–698, 2011.
5. Chalker VJ, Owen WM, Paterson C, et al. Mycoplasmas associated with canine infectious respiratory disease. Microbiology 150:3491–3497, 2004.
6. Creevy KE. Airway evaluation and flexible endoscopic procedures in dogs and cats: laryngoscopy, trans-tracheal wash, tracheobronchoscopy, and bronchoalveolar lavage. Vet Clin North Am Small Anim Pract 2009; 39:869-880
7. Spector D, Wheat J, Beamis D, Rohrbach B, Taboada T, Legendre AM. Antigen testing for the diagnosis of Blastomycosis. J Vet Intern Med 20:711–712, 2006.
8. Egberink H, Addie D, Belak S, et al. Bordetella bronchiseptica infections in cats. J Fel Med Surg 11:610–614, 2009.
9. Anfray P, Bonetti C, Fabbrini F, Magnino S, Mancianti F, Abramo F. Feline cutaneous toxoplasmosis: a case report. Vet Dermat 16:131–136, 2005.
10. American Thoracic Society. Bronchoalveolar lavage guidelines. Jul 8, 2012.
11. Hawkins EC, Berry Cr. Use of a modified stomach tube for bronchoalveolar lavage in dogs. J Am Vet Med Assoc 1999; 215(11):1635-1638.
12. Hawkins EC, Davidson MG, Meuten DJ, et al. Cytologic identification of Toxoplasma gondii in bronchoalveolar lavage fluid of experimentally infected cats. J Am Vet Med Assoc 1997; 210(5):648-650.
13. Hawkins EC, DeNicola DB. Cytologic analysis of tracheal wash specimens and bronchoalveolar lavage fluid in the diagnosis of mycotic infections in dogs. J Am Vet Med Assoc 1990a; 197(1):79-83.
14. Hawkins EC, DeNicola DB, Kuehn NF. Bronchoalveolar lavage in the evaluation of pulmonary disease in the dog and cat: state of the art. J Vet Intern Med 1990b; 4:267-274.
15. Hawkins EC, DeNicola DB, Plier ML. Cytological analysis of bronchoalveolar lavage fluid in the diagnosis of spontaneous respiratory tract disease in dogs: a retrospective study. J Vet Intern Med 1995; 9:386–392.
16. Johnson LR, Drazenovich TL. Flexible bronchoscopy and bronchoalveolar lavage in 68 cats (2001–2006). J Vet Int MEd 2007; 21:219–225.
17. Silverstein DC, Drobratz KJ. Clinical evaluation of the respiratory tract. In: Ettinger SJ, Feldman EC, eds. Textbook of veterinary internal medicine. 7th ed. Saunders Elsevier: St Louis, 2010:1055–1066.
18. Yoneda KY, Morrissey BM. The technique of adult flexible bronchoscopy: part 1. J Respir Dis 2008; 29(11):423-428.
19. Hawkins EC. Bronchoalveolar lavage. In: King LG, ed. Textbook of respiratory disease in dogs and cats. Saunders Elsevier: St Louis, 2004:118-128.
20. Cooper ES, Schober KE, Drost WT. Severe bronchoconstriction after bronchoalveolar lavage in a dog with eosinophilic airway disease. J Am Vet Med Assoc 2005; 227 (8):1257- 1262.
21. Johnson LR, Queen EV, Vernau W, et al. Microbiologic and cytologic assessment of bronchoalveolar lavage fluid from dogs with lower respiratory tract infection: 105 cases (2001-2011). J Vet Intern Med 2013;27(2):259-267.
22. Kirschvink N, Leemans J, Delvaux F, et al. Bronchodilators in bronchoscopy induced airflow limitation in allergen-sensitized cats. J Vet Intern Med 2005;19:161-167.
23. Padrid PA. Laryngoscopy and tracheobronchoscopy of the dog and cat. In: Tams TR, Rawlings CA, eds. Small Animal Endoscopy. St. Louis, MI: Elsevier Mosby, 2011:331- 359.
24. Fluoroscopic-Guided Bronchoalveolar Lavage (F-Bal) for Sampling the Lower Airways of Cats Hooi KS1, Defarges A1 , Nykamp S1, Weese S2, Bienzle D2. Departments of Clinical Studies1 and Pathobiology2, University of Guelph, ON.
– диагностическая процедура, суть которой – введение в бронхи, легкие животного стерильного раствора, в его дальнейшем удалении, а также исследовании клеток полученного образца, определения чувствительность микроорганизма к антибиотикам.
Для проведения диагностики применяется бронхоскоп, что позволяет врачу получить возможность детально оценить дыхательные пути и взять анализ из поврежденного участка.
БАЛ является терапевтической процедурой. У многих домашних питомцев после процедуры дыхательная функция значительно улучшается.
Бронхоскопия вместе с забором смывов в ветеринарной практике применяется часто. Бронхоскопия дает возможность установить степень воспаления, бронхоэктазию, коллабирование дыхательных путей, опухолевое поражение. Забор смывов – оценить характер воспаления по клеточному составу жидкости, провести микробиологическое исследование с целью обнаружить возбудителя.
Особенности диагностики, показания, симптомы: эффективность метода
Забор жидкости выполняется из бронхов, бронхиол, альвеол пациента. В результате врач получает детальную информацию о работе бронхов и легких.
Большая часть заболеваний нижних дыхательных путей обладает схожей симптоматикой. Исключительно по данным физикального обследования (осмотр животного, прослушивание легких) ветеринар не может установить точный диагноз. Тогда, как рентгенография легких способна выявить воспаление бронхов, степень поражения. Однако природу патологического процесса установить благодаря ей не представляется возможным.
БАЛ позволяет разграничить аллергическую, инфекционную, опухолевую проблемы. Этот метод достаточно информативен, если наблюдается длительный инфекционный бронхит, так как позволяет оперативно подобрать подходящий препарат, максимально эффективно воздействующий на возбудителя.
Бронхоальвеолярный лаваж у собак и иных животных выполняют с помощью жесткого бронхоскопа при общей анестезии.
Заболевания, при которых необходима представленная диагностика:
Основные симптомы при воспалении дыхательных путей, коллапсе:
- Хронический непродуктивный кашель;
- Одышка;
- Удушье;
- Цианоз слизистых;
- Непереносимость нагрузок;
- Вялость.
Техника проведения БАЛ: точность диагностики
Исследование выполняют под общей анестезией. Процесс занимает немного времени (около 10 минут). Процедура абсолютно безболезненная, хотя некоторые домашние питомцы могут после забора смывов испытывать дискомфорт. После БАЛ клиническая картина заболевания становится лучше (дыхание улучшается, интенсивность кашля снижается).
Из расчета 0,5 мл на 1 кг веса животного заливается стерильный раствор. Затем быстро аспирируется назад. Хороший результат – получение обратно 50% объема. Оставшаяся часть всасывается слизистой дыхательных путей.
Около 15 минут после процедуры выполняется тщательный мониторинг домашнего питомца на предмет респираторного дистресса, цианоза слизистых. Животное быстро приходит в норму и возвращается хозяину в этот же день.
Результаты микробиологического и цитологического исследований готовятся до 7 рабочих дней. Таким образом, БАЛ – информативное исследованием, позволяющее точно поставить диагноз, а также быстро подобрать лечение для вашего питомца.
Необходимость и безопасность БАЛ: профессиональный подход ветеринаров клиники «Высота»
Важно понимать, длительный хронический прогрессирующий кашель может свидетельствовать о развитии тяжелых бронхолегочных заболеваний, которые лечить достаточно сложно.
Например, кошачья астма отличается высоким риском летального исхода. Поэтому бронхоальвеолярный лаваж у кошек позволит своевременно и точно поставить диагноз, а также подобрать терапию, которая позволит на ранней стадии решить проблему и улучшить качество жизни домашнего питомца.
БАЛ считается безопасным и эффективным в установлении диагноза методом. Он оказывает лечебный эффект. После процедуры характерно на короткое время исчезновение кашля. Требует минимальной анестезии. При проведении подготовки не имеет побочных эффектов.
Лаваж бронхоальвеолярный диагностический - метод исследования, обеспечивающий получение клеточных элементов, белковых и других веществ с поверхности мельчайших бронхов и альвеол путем заполнения субсегмента легкого изотоническим раствором с последующей его аспирацией.
Диагностический субсегментарный бронхоальвеолярный лаваж обычно производится во время бронхофиброскопии под местной анестезией после подведения бронхофиброскопа к устью субсегментарного бронха. Через канал бронхофиброскопа в субсегментарный бронх инстиллируется 50-60 мл изотонического раствора. Поступающую из просвета бронха жидкость, являющуюся бронхо-альвеолярным смывом, аспирируют через канал бронхофиброскопа в полиэтиленовый стаканчик. Инстилляцию и аспирацию повторяют 2-3 раза.
В аспирированной жидкости, очищенной от слизи путем фильтрования через марлю, исследуются клеточный и белковый состав, функциональная активность альвеолярных макрофагов. Для изучения клеточного состава бронхоальвеолярный смыв центрифугируется. Из осадка изготавливаются мазки, которые окрашиваются гематоксилин-эозином или по Романовскому.
Диагностический бронхоальвеолярный лаваж чаще применяется для определения активности диссеминированных процессов в легком. Признаком высокой активности идиопатического фиброзирующего альвеолита является значительное увеличение в бронхоальвеолярном смыве числа нейтрофилов, а при саркоидозе и экзогенном аллергическом альвеолите - возрастание числа лимфоцитов.
Лаваж бронхоальвеолярный лечебный - способ лечения заболеваний легких, основанный на эндобронхиальном введении большого количества изотонического раствора и вымывании сгустков слизи, белкового и другого содержимого мелких бронхов и альвеол.
Лечебный бронхоальвеолярный лаваж может быть выполнен через бронхоскоп или двухпросветную интубационную трубку. Процедура обычно производится под наркозом. Искусственная вентиляция легких при этом осуществляется инжекционным способом. Изотонический раствор последовательно инстиллируется в каждый долевой или сегментарный бронх через управляемый катетер и сразу же аспирируется вместе с вымываемым вязким секретом и сгустками слизи.
Бронхоскопическая методика чаще применяется у больных бронхиальной астмой в астматическом статусе. Для промывания бронхов используется 500-1500 мл изотонического раствора. Аспирировать обычно удается около 1/3-1/2 введенного объема жидкости. Показания к лечебному бронхоальвеолярному лаважу у больных бронхиальной астмой возникают редко, так как комплекс других лечебных мероприятий обычно позволяет купировать астматический статус.
Лечебный бронхоальвеолярный лаваж через двухпросветную интубационную трубку проводится при однолегочной искусственной вентиляции. В просвет инкубационной трубки в главный бронх проводится катетер, через который осуществляются инсталляция и аспирация изотонического раствора. Одномоментно в легкое вводится 1000-1500 мл раствора, обратно аспирируется 90-95% объема вводимой жидкости. Процедура повторяется несколько раз. Общий объем вводимой жидкости варьирует от 3-5 до 40 л.
Тотальный бронхоальвеолярный лаваж через двухпросветную интубационную трубку является наиболее эффективным способом лечения идиопатического альвеолярного протеиноза.
Микробиологическое и иммунологическое исследования БС и БАС следует проводить в том же объеме, что и исследование мокроты, и по аналогичным показаниям. Наибольшее диагностическое значение БС и БАС приобретают при оценке уровня воспаления в трахеобронхиальном дереве, при опухолях легкого и при легочном протеинозе. В настоящее время проводят биохимическое, иммунологическое исследование супернатанта БС и БАС, а также изучение клеточного осадка. При этом подсчитывают жизнеспособность клеток БС и БАС, цитограмму, проводят цитохимические исследования клеток БАЛ, а также цитобактериоскопическую оценку. В последнее время разработана методика подсчета макрофагальной формулы БАЛ при различных заболеваниях бронхолегочной системы. Исследование БАЛ позволяет с помощью измерения поверхностного натяжения и изучения фосфолипидного состава сурфактанта оценить состояние сурфактантной системы легких.
Бронхиальную порцию бронхоальвеолярного лаважа используют для проведения качественных и количественных микробиологических исследований. Помимо этого по изменениям клеточного состава БС можно определить выраженность воспалительной реакции в бронхиальном дереве. Согласно рекомендациям Европейского общества пульмонологов, для нормы характерен следующий состав БС:
Обладает высокой диагностической ценностью лишь при некоторых заболеваниях легких. К интерстициальным заболеваниям, при которых исследование клеточного состава БАС может оказаться полезным, относят гистиоцитоз X, при котором появляются клетки Лангерганса, имеющие характерные Х-тельца в цитоплазме, определяемые при электронноми-кроскопическом исследовании (по иммунофенотипу - это CD1+ клетки). С использованием БАС возможно подтвердить наличие легочного кровотечения. Исследование БАС показано при диагностике альвеолярного протеиноза, для которого характерно наличие внеклеточного вещества, хорошо определяемого при помощи световой (ШИК-реакция) и электронной микроскопии. При этом заболевании БАЛ является не только диагностической, но и терапевтической процедурой.
При интерстициальных заболеваниях легких , вызванных ингаляцией пылевых частиц, с помощью исследования БАС возможно лишь подтвердить экспозицию к пылевому агенту. Специфическая диагностика бериллиоза может быть проведена при исследовании функциональной пролиферативной активности клеток БАС в ответ на действие солей бериллия. При асбестозе в БАС можно обнаружить силикатические тельца в виде характерных волокон - так называемые «железистые» тельца. Такие асбестовые тельца представляют собой асбестовые волокна с агрегированными на них гемосидерином, ферритином, гликопротеином. Поэтому они хорошо окрашиваются при проведении ШИК-реакции и окраски по Перлсу. Описанные волокна в смыве могут быть обнаружены как вне-, так и внутрикле-точно. Крайне редко асбестовые тельца можно обнаружить у лиц, имевших непрофессиональный контакт с асбестом, при этом концентрация таких частиц в БАС не будет превышать 0,5 мл. В БАС также могут быть обнаружены псевдоасбестовые тельца, описанные для пневмокониозов, связанных с воздействием угля, алюминия, стекловолокон и др.
Бронхоальвеолярный лаваж является методом выбора при необходимости получения материала из нижних отделов легких у больных с иммунодепрессивными состояниями. При этом доказана эффективность исследования для обнаружения инфекционных агентов. Так, чувствительность БАЛ при диагностике пневмоцистной инфекции, по некоторым данным, превышает 95%.
При прочих заболеваниях исследование БАС не является высокоспецифичным, однако может дать дополнительную информацию в комплексе клинических, рентгенологических, функциональных и лабораторных данных. Так, при диффузном альвеолярном кровотечении в БАС могут быть обнаружены свободные и фагоцитированные эритроциты и сидерофаги. Это состояние может встречаться при различных заболеваниях, БАС является эффективным методом для выявления диффузного кровотечения даже при отсутствии кровохарканья, когда диагностика этого состояния крайне сложна. Следует помнить, что диффузное альвеолярное кровотечение следует дифференцировать с диффузным альвеолярным повреждением - респираторным дистресс-синдромом взрослых, при котором в смыве также появляются сидерофаги.
Одна из наиболее серьезных дифференциально-диагностических проблем - диагностика идиопатического фиброзирующего альвеолита. При решении этой задачи цитологическое исследование БАС позволяет исключить другие интерстициальные заболевания легких. Так, повышение доли нейтрофилов и эозинофилов в БАС не противоречит диагнозу идиопатического альвеолита. Значительное повышение числа лимфоцитов нехарактерно для этого заболевания, в этих случаях следует задуматься об экзогенном аллергическом альвеолите или других лекарственных или профессиональных альвеолитах.
Цитологическое исследование БАС является чувствительным методом в диагностике экзогенного аллергического альвеолита. Высокий процент лимфоцитов, наличие плазматических и тучных клеток, а также пенистых макрофагов в сочетании с анамнестическими и лабораторными данными позволяют диагностировать эту нозологию. Возможно появление в БАС эозинофилов или гигантских многоядерных клеток. Среди лимфоцитов преобладают клетки с иммунофеноти-пом CD3+/CD8+/CD57+/CD16-. Следует, однако, помнить, что в позднюю фазу болезни, спустя несколько месяцев от начала заболевания, наряду с супрессора-ми начинает расти число Т-хелперов. Другие методы исследования позволяют исключить прочие заболевания, при которых имеет место повышение лимфоцитов, - коллагеновые болезни, лекарственные пневмониты, облитерирующий бронхиолит с организующейся пневмонией или силикоз.
При саркоидозе также отмечено повышение доли лимфоцитов, однако было показано, что соотношение хелперов и супрессоров (CD4+/CD8+) выше 4 характерно именно для этой нозологической формы (чувствительность этого признака составляет, по данным разных авторов, от 55 до 95%, специфичность - до 88%). В БАС больных саркоидозом могут быть также обнаружены гигантские многоядерные клетки типа клеток «инородного тела».
При лекарственных альвеолитах морфологические изменения в легких могут быть разнообразны, часто наблюдают альвеолярный геморрагический синдром или облитерирующий бронхиолит с организующейся пневмонией. В клеточном составе БАС отмечают повышение эозинофилов, нейтрофилов, лимфоцитов, иногда возможно комбинированное повышение этих клеток. Однако чаще всего при лекарственных альвеолитах описывают повышение лимфоцитов, среди которых, как правило преобладают супрессорные цитотоксичные клетки (CD8+). Крайне высокое содержание нейтрофилов встречается, как правило, при приеме антидепрессанта номифензина, особенно в первые 24 ч. При этом доля нейтрофилов в БАС может достигать 80% с последующим ее снижением в течение 2 дней до 2%, одновременно с этим в смыве повышается доля лимфоцитов. Похожие наблюдения описаны и для экзогенного аллергического альвеолита. При приеме амиодаро-на и развитии лекарственного альвеолита (так называемое «амиодароновое легкое») происходят специфические изменения БАС, характеризующиеся появлением большого числа пенистых макрофагов. Это весьма чувствительный, но малоспецифичный признак: такие же макрофаги могут быть обнаружены и при других заболеваниях, в том числе при экзогенном аллергическом альвеолите и облитерирующем бронхиолите с организующейся пневмонией. Такие же макрофаги могут быть обнаружены у лиц, принимающих амиодарон, но без развития альвеолита. Это связано с тем, что данное вещество повышает содержание фосфолипидов, особенно в фагоцитах.